Эхинохром инструкция по применению взрослым

УДК 616.24 : 612.015.3 : 615.5] 001.891.5

В.К. Козлов1, М.В. Козлов1, О.А. Лебедько1, Б.Я. Рыжавский2, Н.В. Морозова2

КЛИНИКО-ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЕ ОБОСНОВАНИЕ ПРИМЕНЕНИЯ ЭХИНОХРОМА А ДЛЯ КОРРЕКЦИИ И ПРОФИЛАКТИКИ СТРУКТУРНО-МЕТАБОЛИЧЕСКИХ НАРУШЕНИЙ В СИСТЕМЕ ОРГАНОВ ДЫХАНИЯ НА РАННИХ ЭТАПАХ ОНТОГЕНЕЗА

Институт охраны материнства и детства СО РАМН1, 680022, ул. Воронежская, 49, кор.1, тел.: 8(4212)-98-05-91; Дальневосточный государственный медицинский университет2, 680000, ул. Муравьева-Амурского, 35, тел./факс: 8(4212)-32-63-93, г. Хабаровск

Эхинохром А (2,3,5,7,8-пентагидрокси-6-этилнафта-линдион-1,4) является одним из самых распространенных спинохромов — хиноидных пигментов морских беспозвоночных. Исследованиями сотрудников Тихоокеанского института биоорганической химии ДВО РАН было установлено, что спинохромы обладают антимикробной и антивирусной активностью, но особый интерес у исследователей вызвало наличие у этих веществ, особенно у эхинохрома А, выраженных антиоксидантных антирадикальных свойств [11]. В дальнейшем именно эти свойства эхинохрома А, выделенного из основного пигмента панцирей морских ежей Strongylocentrotus intermedius и Strongylocentrotus nudus, послужили основой для разработки лекарственного препарата «Гистохром» [4, 10], являющегося в настоящее время одним из наиболее эффективных антиоксидантов нового поколения. Высокая фармакологическая активность эхинохрома А обусловлена его способностью играть роль активного перехватчика свободных радикалов, а также хелатировать ионы переменно-валентных металлов, инициирующих сво-боднорадикальное окисление [1, 6, 14, 15]. Обладая цитопротективным, мембраностабилизирующим, ан-тигипоксантным, антиагрегантным, антивоспалительным свойствами, эхинохром А широко применяется в кардиологии, неврологии и офтальмологии [10, 11, 13]. В последнем случае эхинохром А продемонстрировал высокую эффективность, в том числе в виде монотерапии, при лечении детей в возрасте от 1 мес. до 14 лет с воспалительными заболеваниями глаз и гемофтальмами различного генеза [2, 3].

Одной из актуальнейших задач современной детской пульмонологии является поиск наиболее эффективных методов профилактики и коррекции структурно-метаболических нарушений в системе органов дыхания на ранних этапах онтогенеза. О необходимости такого поиска свидетельствует неуклонно увеличивающееся число детей с пороками развития легких, в подавляющем большинстве случаев осложненных пневмопатиями воспалительного генеза с непрерывно-рецидивирующим типом течения [5]. В условиях Дальнего Востока, известного своим экологическим неблагополучием, подобную ситуацию следует оценивать и как проявление экологически обусловленных эмбриофетопатий [9]. Ранее на разработанной нами экспериментальной модели экопатологии отсроченного внешнесредового дизэмбриогенетического эффекта свинца мы установили ведущую роль свобод-норадикальных механизмов в патогенезе деструктивных

Резюме

На основании клинико-экспериментальных исследований установлено, что эхинохром А способен предупреждать и корригировать нарушения свободнорадикального статуса и деструктивные изменения в системе органов дыхания на ранних этапах онтогенеза.

Ключевые слова: свободнорадикальное окисление, морфология, легкие, онтогенез.

V.K. Kozlov, M.V.Kozlov, О-A. Lebedko, B.Ya. Ryzhavskii, N.V. Morozova

CLINICAL AND EXPERIMENTAL MOTIVATION OF ECHINOCHROME A USAGE FOR CORRECTION AND PREVENTIVE MAINTENANCES OF STRUCTURAL

-METABOLIC DISTURBANCES IN RESPIRATORY SYSTEM AT EARLY STAGES OF ONTOGENESIS

Center-SB RAMS — Scientific research institute of Mother and Child Care; Far Eastern State Medical University, Khabarovsk

Summary

By means of clinical and experimental studies it has been determined that echino chrome A is capable to prevent and correct free-radical disturbances and destructive changes in respiratory system at early stages of ontogenesis

Key words: free radicals oxidation, morphology, lung, ontogenesis.

изменений органов дыхания, обусловленных антенатальным воздействием экотоксиканта [7]. Аналогичные механизмы по типу формирования оксидативного стресса были выявлены нами и на клиническом уровне — у детей с хроническими воспалительными заболеваниями легких в стадии ремиссии на фоне порока развития легких (бронхолегочной дисплазии) [8].

Исходя из вышеизложенного, целью нашей работы явилось клинико-экспериментальное обоснование применения эхинохрома А для коррекции и профилактики структурно-метаболических нарушений в системе органов дыхания на ранних этапах онтогенеза.

Материалы и методы

В экспериментальной части работы изучались 40-дневные белые крысы. Животные были разделены на 3 группы. Первая — потомство интактных самок, вторая

и Контроль Б Свинец а Эхинохром А+свинец

Рис. 1. Показатели хемилюминесценции (в % по отношению к контролю) гомогенатов легких 40-дневных белых крыс Примечание. * — р<0,05 в сравнении с показателями контроля.

Рис. 2. Показатели хемилюминесценции (в % по отношению к контролю) сыворотки крови 40-дневных белых крыс Примечание. * — р<0,05 в сравнении с показателями контроля.

— потомство самок, которым на 17-18 дн. беременности через желудочный зонд вводили однократно 4% раствор нитрата свинца (200 мг/кг массы тела). Третья группа — потомство самок, которым в аналогичном режиме вводили нитрат свинца, но на фоне воздействия эхинохрома А в суточной дозе 0,3 мг/кг массы, четырехкратно (на 17; 18; 19 и 21 дн. беременности), в виде внутрибрюшинных инъекций препарата «Раствор гистохрома 0,02% для инъекций». Все животные содержались в условиях одного вивария, пищу и воду получали ad libitum. После дека-питации животных производили забор биоматериала: для хемилюминесцентного (ХМЛ) анализа — сыворотку крови и гомогенаты легких; для морфологического анализа

— правое легкое, парафиновые срезы которого окрашивали гематоксилином и эозином, при помощи морфо-метрической сетки определяли объемную плотность просветов альвеол и межальвеолярных перегородок, как описано ранее [7].

Клиническая часть работы осуществлялась на базе ХФ ДНЦ ФПД СО РАМН — НИИ ОМиД. Проведено исследование, в которое были включены пациенты (7 мальчиков и 4 девочки) от 7 до 12 лет с хроническими воспалительными заболеваниями легких (ХВЗЛ) в периоде ремиссии на фоне пороков развития легких. Средний возраст пациентов составил 8,64±0,62 г. После комплексного клинико-лабораторного обследования пациенты получали эхинохром А в виде препарата «Раствор гистохрома 0,02% для инъекций», который вводили внутримышечно, по 0,5 мл ежедневно. Курс составлял пять инъекций. Забор сыворотки крови на ХМЛ-анализ проводили дважды: до и после монотерапии эхинохромом А. На проведение исследования было получено разрешение Этического комитета ХФ ДНЦ ФПД СО РАМН — НИИ ОМиД. Родители всех пациентов дали информированное согласие на участие детей в исследовании.

С помощью ХМЛ-анализа оценивали свободнора-дикальный статус экспериментального и клинического биоматериала по методикам, описанным нами ранее [12]. Определяли Ssp (интенсивность свободнорадикального окисления), h (содержание гидроперекисей липидов), Sind-1 (скорость накопления перекисных радикалов), Н (величину, обратную перекисной резистентности), Sind-2 (величину, обратную активности антиоксидантной антирадикальной защиты). Интенсивность ХМЛ, измеренную в милливольтах, рассчитывали на 1 мг влажной ткани

или 1 мл сыворотки крови и выражали в относительных единицах. Полученные данные обработаны статистически с использованием 1-критерия Стьюдента.

Результаты и обсуждение

Анализ хемилюминограмм продемонстрировал (рис. 1, 2), что в легких и крови 40-дневных крыс, перенесших антенатальное воздействие нитрата свинца, имело место достоверное увеличение всех исследуемых ХМЛ-показа-телей по отношению к контролю: величины 8зр возросли в 2,0 и 2,4 раза, Ь — в 2,1 и 3,4 раза, 8тё-1 — в 2,2 и 2,8 раза, 8тё-2 — в 2,1 и 3,9 раза, Н — в 2,7 и 3,6 раза соответственно. Подобная ХМЛ-динамика свидетельствует о развитии оксидативного стресса на органном уровне и на уровне организма в целом. Следствием свободнора-дикального повреждения и окислительной модификации соответствующих биоструктур явились деструктивные изменения в легких: гиперплазия лимфоидной ткани в стенках бронхов и перибронхиальной соединительной ткани, снижение относительного объема компартмента респираторного отдела легких (рис. 3).

В легких и крови 40-дневных белых крыс, антенатально подвергнутых воздействию нитрата свинца на фоне введения эхинохрома А, все исследуемые показатели ХМЛ-кинетики не имели достоверных отличий от аналогичных величин в группе контроля (рис. 1, 2). Морфологическая картина легких при этом также соответствовала

Рис. 3. Легкое 40-дневной крысы, подвергнутой антенатальному воздействию нитрата свинца. Окраска гематоксилином и эозином. Увеличение 7×10

Параметры хемилюминесценции (отн. ед.) сыворотки крови у детей с ХБЗЛ в стадии ремиссии на фоне применения эхинохрома А (М±m)

Примечание. * — р<0,05 при сравнении между группами.

норме: патологических отклонений в структуре органа выявлено не было.

Полученные экспериментальные данные обосновывают возможность применения эхинохрома А для антенатальной профилактики и коррекции дефектов морфогенеза легких, обусловленных свободнорадикальными механизмами эмбрионального импринтинга экотоксикантов.

Эффективность применения эхинохрома А для коррекции нарушений свободнорадикального статуса при непосредственном (прямом) воздействии и на более позднем этапе онтогенеза оценивалась у детей с ХВЗЛ в стадии ремиссии на фоне пороков развития легких. Анализ свободнорадикального статуса сыворотки крови выявил, что после применения препарата все исследуемые ХМЛ-параметры достоверно снизились в сравнении с аналогичными показателями до применения эхинохро-ма А. Так, уровни Sind-2 и Н снизились в 1,6 и 1,9 раза, что свидетельствует о соответствующем повышении активности антиоксидантной антирадикальной защиты и перекисной резистентности. На этом фоне активность свободнорадикальных процессов ^р) снизилась в 1,5 раза, концентрация гидроперекисей липидов (Ь) — в 1,7 раза, скорость образования перекисных радикалов — в 1,6 раза (таблица). Результаты ХМЛ-ана-лиза динамики показателей свободнорадикального статуса сыворотки крови на фоне применения эхинохрома А у детей с ХВЗЛ в стадии ремиссии с пороками развития легких свидетельствуют о том, что в данной клинической ситуации препарат эффективно реализует свои антиоксидантные свойства и значительно снижает интенсивность свободнорадикального окисления, в том числе на этапе пероксидации липидов.

Таким образом, применение эхинохрома А при структурно-метаболических нарушениях в системе органов дыхания на ранних этапах онтогенеза патогенетически целесообразно и высокоэффективно. Следует отметить не только терапевтическую, но и профилактическую значимость выявленных эффектов.

Выводы

1. Антенатальное воздействие нитрата свинца индуцирует деструктивные свободнорадикальные и морфологические изменения в легких 40-дневных белых крыс. Антенатальное воздействие эхинохрома А предупреждает развитие этих нарушений.

2. Применение эхинохрома А в качестве монотерапии у детей с ХВЗЛ в стадии ремиссии на фоне пороков развития легких повышает перекисную резистентность, антиоксидантную антирадикальную защиту организма и эффективно снижает интенсивность свободнорадикаль-

ного окисления, в том числе на этапе пероксидации липидов.

3. Эхинохром А способен предупреждать и корригировать нарушения свободнорадикального статуса и деструктивные изменения в системе органов дыхания на ранних этапах онтогенеза.

Литература

1. Бердышев Д.В., Глазунов В.П., Новиков В. Л. Изучение механизмов антиоксидантного действия 2,3,5,6,8-пентагидрокси-7-этил-1,4-нафтохинона (эхинохрома А) с использованием теории функционала плотности. Сообщ. 1. Взаимодействие эхинохрома А с гидропероксидным радикалом // Известия Академии наук. Серия химическая. — 2007. — №3. — С. 400-415.

2. Гусева М.Р., Дубовская Л.А., Чиненов И.М. и др. Комплексное лечение внутриглазных кровоизлияний с применением антиоксидантного препарата «Гистохром» у детей // Рефракц. хирургия и офтальмология. — 2003. -Т.3, №1. — С. 70-76.

3. Гусева М.Р., Чиненов И.М., Ширшов М.В. и др. Применение антиоксидантного препарата «Гистохром» в комплексном лечении внутриглазных кровоизлияний у детей разного возраста // Вестник офтальмологии. — 2005.

— №2. — С. 24-28.

4. Догадова Л.П., Тихомирова Н.М., Максимов О.Б и др. Средство, обладающее свойством рассасывания гемоф-тальмов // Патент России № 1826909, 1993. Бюл. №25.

5. Козлов В.К., Рыжавский Б.Я., Лебедько О.А. и др. Этиопатогенетические и клинические особенности формирования хронических обструктивных болезней легких у детей Приамурья // Бюл. физиол. и патол. дыхания СО РАМН. — 2007. — Вып. 24. — С. 11-12.

6. Лебедев А.В., Иванова М.В., Красновид Н.И. и др. Кислотные свойства и взаимодействие с супероксид анион-радикалом эхинохрома А и его структурных аналогов // Вопросы медицинской химии. — 1999. — Т. 45, №2. — С. 123-130.

7. Лебедько О.А., Рыжавский Б.Я. Влияние введения нитрата свинца беременным крысам на легкие их потомства // Бюл. эксперим. биол. и мед. — 2004. — Т. 139, №6.

— С.621-623.

8. Лебедько О.А., Гусева О.Е., Козлов В.К. Нарушения оксидативного метаболизма при хронических брон-хообструктивных заболеваниях легких у детей // Бюл. физиол. и патол. дыхания СО РАМН. — 2007. — Вып. 27.

— С. 12, 13.

9. Михайлов В.М., Козлов В.К. Психическое и физическое здоровье детей и подростков Приамурья на рубеже XXI века. — Хабаровск, 2000. — 119 с.

10. Мищенко Н.П., Федореев С.А., Багирова В.Л. Новый оригинальный отечественный препарат «Гистохром» // Хим.-фармацевт. журн. — 2003. — Т. 37. — С. 49-53.

11. Мищенко Н.П., Федореев С.А., Догадова Л.П. Препарат «Гистохром» для офтальмологии // Вестник ДВО РАН. — 2004. — №3. — С. 111-119.

12. Приезжева Е.Ю., Лебедько О.А., Рыжавский Б.Я. и др. Влияние введения нитрата свинца беременным крысам на почки их потомства // Дальневост. мед. журнал.-2007.- №3.- С. 30-32.

13. Стоник В.А., Гусев Е.И., Мартынов М.Ю. и др. Поиск веществ для лечения геморрагического инсуль-

Период Параметры

Ь Н

До применения эхинохрома А 0,127 ±0,005 0,161 ±0,008 0,297 ±0,008 0,410 ±0,010 0,451 ±0,016

После применения эхинохрома А 0,087 ±0,005* 0,096 ±0,008* 0,182 ±0,010* 0,221 ±0,009* 0,290 ±0,008*

та. Использование магнитно-резонансной томографии в оценке эффективности гистохрома // Доклады Академии наук. — 2005.- Т. 405, № 5. — С. 696-698.

14. Lebedev A.V., Ivanova M.V., Levitsky D.O. Iron chelators and free radical scavengers in naturally occurring polyhydroxylated 1,4-naphthoquinones // Hemoglobin. -2008. — Vol. 32, №1. — P. 165-179.

15. Lebedev A.V., Ivanova M.V., Levitsky D.O. Echinochrome, a naturally occurring iron chelator and free radical scavenger in artificial and natural membrane systems // Life Sci. — 2005. — Vol. 76, №8. — P. 863-875.

Координаты для связи с авторами: Козлов В.К. — e-mail: [email protected]

□□□

УДК 612.015.11 : 616.24 — 002.2-06] — 053.2

О.Е. Гусева, О.А. Лебедько, В.К. Козлов

ОСОБЕННОСТИ БИОГЕНЕЗА СВОБОДНЫХ РАДИКАЛОВ У ДЕТЕЙ С ХРОНИЧЕСКИМИ ВОСПАЛИТЕЛЬНЫМИ ЗАБОЛЕВАНИЯМИ ЛЕГКИХ НА ФОНЕ ДЕФЕКТОВ ОРГАНОГЕНЕЗА РЕСПИРАТОРНОЙ СИСТЕМЫ

Институт охраны материнства и детства СО РАМН, 680022, ул. Воронежская, 49, кор. 1, тел.: 8(4212)-98-05-91, г. Хабаровск

Болезни органов дыхания стабильно занимают в России, в том числе в Дальневосточном федеральном округе, первое место в структуре общей заболеваемости детей и подростков [4], значительный удельный вес среди них составляют хронические воспалительные заболевания легких (ХВЗЛ). В 5-20% случаев ХВЗЛ формируются на фоне пороков развития легких, принимая при этом тяжелый, непрерывно рецидивирующий характер течения [3, 6]. По мнению [5], в основе прогредиентности данного вида патологии лежат недостаточно изученные биологические дефекты основополагающих механизмов саноге-неза, что диктует необходимость углубленного изучения механизмов сигнальной трансдукции, опосредующих персистирующее течение заболевания.

Известно, что в качестве мессенджеров межклеточной и внутриклеточной сигнализации радикальные дериваты кислорода регулируют морфогенез органов дыхания, обеспечивая реализацию антагонистических процессов детерминации, пролиферации, дифференцировки, редукции и интеграции [9, 13]. Кроме того, свободные радикалы или непосредственно, или через формирование продуктов липидной пероксидации, активируя ре-докс-чувствительные факторы транскрипции и каскады стресс-киназ, являются триггерами воспалительных процессов в респираторной системе [12]. Тем не менее, данных о процессинге свободных радикалов при ХВЗЛ на фоне дефектов органогенеза у детей нами в доступной литературе не обнаружено.

Целью настоящей работы явилась оценка биогенеза свободных радикалов в сыворотке крови и мембранах эритроцитов у детей в периоды обострения и ремиссии ХВЗЛ на фоне дефектов органогенеза респираторной системы.

Материалы и методы

На базе клиники НИИ охраны материнства и детства было проведено исследование, в которое были включены 43 пациента 12-17 лет с ХВЗЛ в периоды обострения по бронхитическому типу и клинико-лабораторной ремиссии на фоне пороков развития легких. Контрольную группу составили 23 ребенка I и II группы здоровья. Анализируемые группы были сопоставимы по возрастно-по-ловому составу. Диагноз ХВЗЛ установлен на основании комплексного клинического обследования по дифференциально-диагностическому алгоритму, включая трансторакальную биопсию с морфологическим исследованием биоптатов легких. В 100% подтвержден порок развития легких (гипо- и дисплазия легких).

Забор крови у детей обеих групп для исследования свободнорадикального статуса осуществлялся натощак, в утренние часы. Для интегральной оценки процессов биогенеза свободных радикалов в сыворотке крови и мембранах эритроцитов использовали метод хемилюми-несценции (ХЛ). Регистрацию ХЛ осуществляли на люминесцентном спектрометре LS 50В «PERKIN ELMER» по методикам [1, 2, 7]. При исследовании спонтанной и индуцированной Fe2+ ХЛ определяли: S-sp как светосум-му за 1 мин спонтанной ХЛ, величина которой коррелирует с интенсивностью генерации свободных радикалов; Sind-1 как светосумму за 2 мин Fe^-индуцированной ХЛ, величина которой отражает интенсивность накопления перекисных радикалов. Определяли Sluc — светосумму за 1 мин люцигенин-зависимой ХЛ, величина которой прямо коррелирует с содержанием супероксиданион-ра-дикала. Кинетику ХЛ, инициированную Н2О2 в присутствии люминола, анализировали по параметрам: S-lum — светосумме за 1 мин люминол-зависимой ХЛ, вели-

Гистохром

Остались вопросы? Нужна консультация?

Информация на сайте Medum.ru – справочная. Содержимое сайта Medum.ru – инструкции, текст, графика, видео, изображения предназначены исключительно для справочных целей. Информация, размещённая на сайте Medum.ru не предназначена для замены профессиональной медицинской консультации, диагностики или лечения. Обязательно обращайтесь к медицинским специалистам и не откладывайте их поиск из-за того, что вы прочитали на сайте Medum.ru. Medum.ru не рекомендует и не одобряет какие-либо лекарственные средства, биологически активные добавки, гомеопатические средства, тесты, врачей, медицинские учреждения, аптеки, отзывы, мнения, комментарии и другую информацию упомянутую на сайте. Внешний вид препаратов (фото и видео) и инструкции могут отличаться от опубликованных и могут зависеть от производителя, упаковки, дозировки, форм выпуска. Обязательно консультируйтесь с медицинскими специалистами.

Medum.ru — справочник лекарственных препаратов. Всё о здоровье, отзывы, мнения, вопросы и ответы, а также другие полезные разделы и сервисы.

Все права защищены. 2016–2025 © ООО «Медум.ру» (Ltd. Medum.ru)

Медум® (Medum®)

Гистохром — инструкция по применению

Синонимы, аналоги

Статьи

Регистрационный номер

Р N002363/02

Торговое наименование препарата

Гистохром®

Международное непатентованное наименование

Пентагидроксиэтилнафтохинон

Лекарственная форма

раствор для инъекций

Состав

В 1 мл препарата содержится 0,2 мг пентагидроксиэтилнафгохинона в качестве активного вещества, вспомогательные вещества: натрия карбонат 0,08 мг, натрия хлорида 0,9% раствор 1 мл.

Описание

Прозрачная жидкость красно-коричневого цвета.

Фармакотерапевтическая группа

Антиоксидантное средство

Код АТХ

C01EB

Фармакодинамика:

Гистохром относится к антиоксидантным препаратам. Механизм действия связан со способностью гистохрома стабилизировать клеточные мембраны, взаимодействовать с активными формами кислорода, свободными радикалами, проявлять свойства хелатора металлов переменной валентности. Гистохром снижает количество продуктов перекисного окисления липидов.

Фармакокинетика:

Показания:

Взрослым в составе комплексной терапии при следующих офтальмопатологиях:

— дистрофические заболевания сетчатки и роговицы, макулярная дегенерация;

— первичная открытоугольная глаукома;

— диабетическая ретинопатия сетчатки;

— кровоизлияние в стекловидное тело, сетчатку, переднюю камеру;

— дисциркуляторное нарушение в центральной артерии и вене сетчатки.

Противопоказания:

Индивидуальная гиперчувствительность к компонентам препарата, дети до 18 лет.

Беременность и лактация:

Безопасность применения при беременности и в период лактации не установлена, поэтому препарат противопоказан при беременности и в период лактации.

Способ применения и дозы:

В виде субконъюнктивальных и парабульбарных инъекций по 0,3-0,5 мл раствора 0,2 мг/мл ежедневно или через день. Курс лечения 5-10 инъекций. При необходимости курс лечения повторяют через 3-4 месяца.

Побочные эффекты:

Возможна умеренная болезненность после инъекции в месте укола, а также местные аллергические реакции.

Передозировка:

Данные о передозировке препаратом отсутствуют.

Взаимодействие:

Не допускается при введении смешивать Гистохром с препаратами, содержащими белки, соли кальция, железа.

Особые указания:

Форма выпуска/дозировка:

Раствор для инъекций.

Упаковка:

По 1 мл раствора для инъекций 0,2 мг/мл в ампулах темного стекла.

По 5 или 10 ампул вместе с инструкцией по применению препарата, ножом или скарификатором ампульным в коробке из картона.

По 5 ампул в контурной ячейковой упаковке из поливинилхлоридной пленки. Допускается упаковка в контурную ячейковую упаковку из поливинилхлоридной пленки и фольги или материала упаковочного.

По 1 или 2 контурных ячейковых упаковок вместе с инструкцией по применению препарата, ножом ампульным или скарификатором ампульным в пачке из картона. При использовании ампул с надсечкой, или идентификационной точкой или кольцом разлома скарификатор и нож ампульный не вкладывается.

Условия хранения:

В защищенном от света месте при температуре от 8 до 25 °С.

Хранить в недоступном для детей месте.

Срок годности:

2 года.

Не использовать препарат по истечении срока годности, указанного на упаковке.

Условия отпуска

По рецепту

Производитель

Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Тихоокеанский институт биоорганической химии им. Г.Б. Елякова Дальневосточного отделения Российской академии наук, 117105, г.Москва, ул.Нагатинская, д.1, Россия

Владелец регистрационного удостоверения/организация, принимающая претензии потребителей:

Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Тихоокеанский институт биоорганической химии им. Г.Б. Елякова Дальневосточного отделения Российской академии наук

Комментарии

(видны только специалистам, верифицированным редакцией МЕДИ РУ)