Аргон инструкция по применению

Кислород газообразный медицинский — Аргон — инструкция по применению

Синонимы, аналоги

Статьи

Регистрационный номер

ЛП-002062

Торговое наименование препарата

Кислород газообразный медицинский

Международное непатентованное наименование

Кислород

Лекарственная форма

газ сжатый

Состав

Кислород медицинский — 100%.

Описание

Бесцветный газ без запаха.

Фармакотерапевтическая группа

Антигипоксантное средство

Код АТХ

V03AN

Фармакодинамика:

Противогипоксическое средство, значительно улучшает кислородное насыщение тканей и гемодинамику, защищает головной мозг от гипоксии. Оказывает метаболическое действие.

В условиях нормобарической гипоксии повышает устойчивость организма к эндогенным и экзогенным патологическим факторам.

Показания:

Различные заболевания, сопровождающиеся гипоксией:

— заболевания органов дыхания (в т.ч. пневмония, бронхиальная астма), сердечно-сосудистой системы (в т.ч. хроническая сердечная недостаточность, коллапс, аритмии, отек легких);

— отравление оксидом углерода, синильной кислотой, удушающими веществами (в т.ч. хлор, фосген);

— ослабление дыхания в послеоперационном периоде;

— ишемия нижних конечностей, травмы конечностей;

— сосудистые заболевания головного мозга;

— гипербарическая оксигенация (операции на сердце и легких, реконструктивные операции на органах желудочно-кишечного тракта (ЖКТ), интоксикация, анемия, язвенная болезнь желудка и 12-перстной кишки, хронический гепатит);

— гипокситерапия (ишемическая болезнь сердца, артериальная гипертензия, заболевания ЖКТ, астения, депрессия, повышенная утомляемость, состояние после лучевой терапии).

Противопоказания:

Гипербарическая оксигенация: наличие полостей в легких, бронхоплевральный свищ, некупированный пневмоторакс; нарушение проходимости слуховых труб и каналов, соединяющих придаточные пазухи носа с внешней средой; острые респираторные вирусные инфекции; эпилепсия; артериальная гипертензия; новообразования.

С осторожностью:

При гипербарической оксигенации: бронхиальная астма, врожденный сфероцитоз, высокая лихорадка, неврит зрительного нерва, инфекции верхних дыхательных путей, беременность, одновременный прием цисплатина, доксорубицина, дисульфирама, мафенида (повышение токсичности данных лекарственных препаратов), эмфизема легких, баротравма ушей.

Беременность и лактация:

В связи с отсутствием специальных клинических исследований во время беременности и при грудном вскармливании препарат следует применять, когда польза для матери превышает потенциальный риск для плода и/или ребенка и под непосредственным контролем врача.

Способ применения и дозы:

Ингаляционно, в концентрации 40-60 %, в смеси с воздухом, в количестве 4-5 л/мин. При ослаблении дыхания в послеоперационном периоде, при отравлениях, интоксикациях используют 100 % кислород или смесь с углекислотой.

Режим дозирования во всех возрастных группах, кроме новорожденных, совпадает. Для введения кислорода в высоких и низких концентрациях применяется разная аппаратура. Минимальная концентрация кислорода не должна быть ниже его содержания в атмосферном воздухе (20,9 %).

Системы для ингаляции с фиксированной концентрацией кислорода (независимо от дыхательных попыток пациента): высокопоточные — маски, обеспечивающие подачу кислорода с высокой скоростью потока; низкопоточные — анестезиологические контуры. В данных системах концентрация кислорода задается врачом.

Системы для ингаляции, обеспечивающие подачу различной концентрации кислорода (в зависимости от силы вдоха пациента): без рециркуляции — катетеры и канюли; с рециркуляцией — кислородные маски. Данные системы работают только в условиях самостоятельного дыхания пациента, который вдыхает газовую смесь. Содержание кислорода в газовой смеси будет зависеть от состояния пациента и используемого устройства.

У новорожденных концентрация кислорода во вдыхаемой смеси не должна превышать 40 % (риск развития ретролентальной фиброплазии).

У пожилых пациентов с хроническим бронхитом вдыхаемая концентрация кислорода должна повышаться на 1 % и не превышать 30 % (чаще всего).

Гипербарическая оксигенация: процедуру проводят в специальных барокамерах, для терапевтических целей используют аппараты (одноместные камеры), создающие давление кислорода 1,2-1,6-2 атм. Проводят 1 сеанс в день (40-60 мин), курс лечения — 8-10 сеансов. При язвенной болезни желудка и 12-перстной кишки, хроническом гепатите вводят под давлением 0,7-1 избыточной атм. (сеансами по 45 мин); курс лечения -15 сеансов.

Гипокситерапия: проведение специальных тренировок, приводящих к кислородной недостаточности (нормобарической гипоксии) путем использования газовых смесей с пониженным содержанием кислорода для создания искусственной гипоксии (при нормальном атмосферном давлении).

Побочные эффекты:

Гипербарическая оксигенация: гипогликемия, головная боль, онемение пальцев рук, преходящее нарушение зрения, баротравма ушей (боль в ухе, повреждение и разрыв барабанной перепонки) и околоносовых пазух, усталость, ускорение созревания катаракты, редко — острая кислородная интоксикация (судороги, отек легких).

Кислородотерапия: ишемия миокарда у пациентов, перенесших инфаркт миокарда.

Передозировка:

При длительном и бессистемном применении высоких концентраций кислорода (свыше 60-80%) при большом потоке (свыше 6-8 л/мин) имеется опасность гипероксигенации и как следствие — отека легких. При продолжительном действии кислорода развиваются декомпенсаторные реакции, проявляющиеся функциональными и структурными нарушениями в различных системах и органах. Признаки кислородной интоксикации появляются через определенный период. Его длительность может зависеть от индивидуальной чувствительности к кислороду, температуры и влажности окружающей среды, концентрации во вдыхаемой газовой смеси, эмоциональных и физических нагрузок, состояния центральной нервной системы и пр.

Лечение: симптоматическое.

Взаимодействие:

Не изучено.

Форма выпуска/дозировка:

Газ сжатый.

Упаковка:

0,156 м³ в баллоне вместимостью 1 дм³.

0,312 м³ в баллоне вместимостью 2 дм³.

0,780 м³ в баллоне вместимостью 5 дм³.

1,560 м³ в баллоне вместимостью 10 дм³.

3,120 м³ в баллоне вместимостью 20 дм³.

6,240 м³ в баллоне вместимостью 40 дм³.

7,800 м³ в баллоне вместимостью 50 дм³.

49,920 м³ в моноблоке (8 баллонов вместимостью 40 дм³ по 6,240 м³).

62,400 м³ в моноблоке (8 баллонов вместимостью 50 дм³ по 7,800 м³).

64,896 м³ в моноблоке (8 баллонов вместимостью 52 дм³ по 8,112 м³).

74,880 м³ в моноблоке (12 баллонов вместимостыо 40 дм³ по 6,240 м³).

93,600 м³ в моноблоке (12 баллонов вместимостыо 50 дм³ по 7,800 м³).

97,344 м³ в моноблоке (12 баллонов вместимостью 52 дм³ по 8,112 м³).

Объем содержимого баллона/моноблока приведен для условий: избыточное давление 14,7 МПа (150 кгс/см²), температура 20 °С.

0,206 м³ в баллоне вместимостью 1 дм³;

0,412 м³ в баллоне вместимостью 2 дм³;

1,030 м³ в баллоне вместимостью 5 дм³;

2,060 м³ в баллоне вместимостью 10 дм³;

4,120 м³ в баллоне вместимостью 20 дм³;

8,240 м³ в баллоне вместимостью 40 дм³;

10,300 м³ в баллоне вместимостью 50 дм³.

65,920 м³ в моноблоке (8 баллонов вместимостью 40 дм³ по 8,240 м³).

82,400 м³ в моноблоке (8 баллонов вместимостью 50 дм³ по 10,300 м³).

85,696 м³ в моноблоке (8 баллонов вместимостью 52 дм³ по 10,712 м³).

98,880 м³ в моноблоке (12 баллонов вместимостью 40 дм³ по 8,240 м³).

123,600 м³ в моноблоке (12 баллонов вместимостью 50 дм³ по 10,300 м³).

128,544 м³ в моноблоке (12 баллонов вместимостью 52 дм³ по 10,712 м³).

Объем содержимого упаковки приведен для условий: избыточное давление 19,6 МПа (200 кгс/см²), температура 20 °С.

Используют баллоны стальные бесшовные, имеющие сертификат соответствия (зарегистрированную декларацию) в соответствии с требованиями Технического регламента (Утв. Постановлением Правительства РФ от 15.09.2009 г. № 753), окрашенные в голубой цвет с нанесенной по окружности надписью черного цвета «Кислород медицинский».

Баллоны/моноблоки оборудуют вентилем/клапаном в соответствии с ГОСТ 26460-85 и устройством контроля первого вскрытия, в комплекте с инструкцией по медицинскому применению.

Условия хранения:

В сухом отдельном помещении или на открытых площадках под навесом, защищенных от атмосферных осадков и прямых солнечных лучей, вдали от источников отопления и источников открытого огня при температуре от минус 50 °С до 50 °С. Хранить в недоступном для детей месте.

Срок годности:

18 месяцев от даты наполнения баллонов.

Не применять по истечении срока годности, указанного на этикетке баллона.

Условия отпуска

По рецепту

Производитель

ЗАО «Аргон», г. Тула, ул. Пржевальского, д. 11, Россия

Владелец регистрационного удостоверения/организация, принимающая претензии потребителей:

ЗАО «Аргон»

Комментарии

(видны только специалистам, верифицированным редакцией МЕДИ РУ)

Памятка по использованию аргонового блока с ЭХВЧ аппаратом в операционной

В данной статье мы доступным языком изложим свод не сложных, но очень важных правил использования аргоно-плазменного блока совместно с электрохирургическим аппаратом в операционной.

Аргон — это не имеющий цвета и запаха инертный газ. Совместно с коагуляторами он используется в газообразном состоянии и имеет класс опасности 2.1. Газ довольно безопасный и стабильный поставляется в серых баллонах с надписью «АРГОН».

Благодаря своей инертности аргон не влияет на газообмен в легких, как диоксид углерода (широко используется совместно с коагуляторами), однако, при больших концентрациях аргон способен вытеснять молекулы кислорода и, таким образом, активное использование аргона в плохо вентилируемом помещении, может привести к асфиксии, поэтому важно проверять работоспособность вентиляции перед использованием аргоно-плазменного блока в операционной.

Баллоны с газом аргон имеют большое внутреннее давление и вес, их важно правильно хранить и транспортировать. Падение баллона может привести к повреждению вентиля и самого баллона. Это может привести к утечки газа! Поэтому очень важно следовать инструкции по технике безопасности при использовании и транспортировки баллонов.

Эмболия и эмфизема при использовании аргона.

При использовании аргоно-плазменного блока возникает вероятность инсуфляции, это может стать причиной газовой эмболии. Хотя аргон не вызывает свертывания крови, попадание газа в сосуд может полностью перекрыть кровоток (эмфизема). Использование аргона с тканями, которые наслаиваются друг на друга может вызвать расслоение тканей и повышенный расход газа.

Чтобы избежать этих проблем необходимо соблюдать следующие правила:

— Не направлять кончик аппликатора в ткань пациента.

По возможности располагайте аппликатор под углом от 30⁰ до 60⁰ . Использование аппликатора под таким углом не препятствует видимости операционного поля и снижает глубину проникновении аргона внутрь ткани пациента.

Если по какой-либо причине плазма разгорается не корректно, необходимо увеличить мощность аппарата или заменить аппликатор (есть вероятность, что наконечник аппликатора износился)

— Запрещается использовать аргон для герметизации крупных сосудов.

Кровотечение крупного сосуда необходимо останавливать с помощью монополярных или биполярных режимов коагуляции или легирования. Аргоновая коагуляция осуществляет только поверхностный гемостаз.

Инсуфляция в лапароскопических операциях

При проведении лапароскопических операций аргон вдувается внутрь тела пациента, тут возникает опасность чрезмерной концентрации газа в полости. Возникает опасность газовой эмфиземы, если давление газа превышает допустимые показатели в кровеносных сосудах. Чтобы избежать инсуфляции кровеносных сосудов в лапароскопических операциях следует: — Использовать специальные эндоскопические аппликаторы, не позволяющие установить поток газа выше 3 л/ч. — Использовать инсуфлятор с датчиком давления. Он просигнализирует, если допустимо возможный уровень газа превышен. — Давать скопившемуся газу выходить из полости пациента, тем самым снижать давление до приемлемого уровня.

Картинка с сайта: klsmartin.su

Для подбора аппликаторов и подробной консультации по аргоно-плазменному блоку KLS Martin свяжитесь с нашими менеджерами.

1. Soldatov P.E., D’iachenko A.I., Pavlov B.N., Fedotov A.P., Chuguev A.P. Survival of laboratory animals in argon-containing hypoxic gaseous environments. (in Rus.) Aviakosm Ekolog Med. 1998; 32 (4): 33–37. PMID: 9858985

2. Hafner C., Qi H., Soto-Gonzalez L., Doerr K., Ullrich R., Tretter E.V., Markstaller K., Klein K.U. Argon preconditioning protects airway epithelial cells against hydrogen peroxide-induced oxidative stress. Eur Surg Res. 2016; 57 (3-4): 252–262. DOI: 10.1159/000448682. PMID: 27560977

3. Brücken A., Kurnaz P., Bleilevens C., Derwall M., Weis J., Nolte K., Rossaint R., Fries M. Dose dependent neuroprotection of the noble gas argon after cardiac arrest in rats is not mediated by K (ATP)-channel opening. Resuscitation. 2014; 85 (6): 826–832. DOI: 10.1016/j.resuscitation.2014.02.014. PMID: 24582739

4. Lemoine S., Blanchart K., Souplis M., Lemaitre A., Legallois D., Coulbault L., Simard C., Allouche S., Abraini J.H., Hanouz J-L., Rouet R., Sallé L., Guinamard R., Manrique A. Argon exposure induces postconditioning in myocardial ischemia-reperfusion. J Cardiovasc Pharmacol Ther 2017; 22 (6): 564–573. DOI: 10.1177/1074248417702891. PMID: 28381122

5. Mayer B., Soppert J., Kraemer S., Schemmel S., Beckers C., Bleilevens C., Rossaint R., CoburnN., Goetzenich A., Stoppe C. Argon induces protective effects in cardiomyocytes during the second window of preconditioning. Int J Mol Sci 2016; 17 (7): 1159. DOI: 10.3390/ijms17071159. PMID: 27447611

6. Ulbrich F., Kaufmann K., Roesslein M., Wellner F., Auwärter V., Kempf J., Loop T., Buerkle H., Goebel U. Argon mediates anti-apoptotic signaling and neuroprotection via inhibition of toll-Like receptor 2 and 4. PLoS One. 2015; 10 (12): e0143887. DOI: 10.1371/journal.pone.0143887. PMID: 26624894.

7. Ulbrich F., Lerach T., Biermann J., Kaufmann K.B., Lagreze W.A., Buerkle H., Loop T., Goebel U. Argon mediates protection by interleukin-8 suppression via a TLR2/TLR4/STAT3/NF-κB pathway in a model of apoptosis in neuroblastoma cells in vitro and following ischemia-reperfusion injury in rat retina in vivo. J Neurochem. 2016 Sep; 138 (6): 859–873. DOI: 10.1111/jnc.13662. PMID: 27167824

8. Spaggiari S., Kepp O., Rello-Varona S., Chaba K., Adjemian S., Pype J., Galluzzi L., Lemaire M., Kroemer G. Antiapoptotic activity of argon and xenon. Cell Cycle. 2013; 12 (16): 2636–2642. DOI: 10.4161/cc.25650. PMID: 23907115

9. Fahlenkamp A.V., Rossaint R., Coburn M. Neuroprotection by noble gases: new developments and insights. (in Germ.) Anaesthesist. 2015; 64 (11): 855–858. DOI: 10.1007/s00101-015-0079-6. PMID: 26329914

10. Fahlenkamp A.V., Rossaint R., Haase H., Al Kassam H., Ryang Y-M., Beyer C., Coburn M. The noble gas argon modifies extracellular signal-regulated kinase 1/2 signaling in neurons and glial cells. Eur J Pharmacol. 2012; 674 (2): 104–111. DOI: 10.1016/j.ejphar.2011.10.045. PMID: 22094065

11. Zhao H., Mitchell S., Ciechanowicz S., Savage S., Wang T., Ji X., Ma D. Argon protects against hypoxic-ischemic brain injury in neonatal rats through activation of nuclear factor (erythroid-derived 2)-like 2. Oncotarget. 2016; 7 (18): 25640–51. DOI: 10.18632/oncotarget.8241. PMID: 27016422.

12. Zhao H., Mitchell S., Koumpa S., Cui Y.T., Lian Q., Hagberg H., Johnson M.R., Takata M., Ma D. Heme oxygenase-1 mediates neuroprotection conferred by argon in combination with hypothermia in neonatal hypoxia-ischemia brain injury. Anesthesiology. 2016; 125 (1): 180–192. DOI: 10.1097/ALN.0000000000001128. PMID: 27065095

13. Harris K., Armstrong S.P., Campos-Pires R., Kiru L., Franks N.P., Dickinson R. Neuroprotection against traumatic brain injury by xenon, but not argon, is mediated by inhibition at the N-methyl-D-aspartate receptor glycine site. Anesthesiology 2013; 119 (5): 1137–1148. DOI: 10.1097/ALN.0b013e3182a2a265. PMID: 23867231

14. David H.N., Haelewyn B., Risso J-J., Abraini J.H. Modulation by the noble gas argon of the catalytic and thrombolytic efficiency of tissue plasminogen activator. Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol 2013; 386 (1): 91–95. DOI: 10.1007/s00210-012-0809-0. PMID: 23142817

15. Höllig A., Weinandy A., Liu J., Clusmann H., Rossaint R., Coburn M. Beneficial properties of argon after experimental subarachnoid hemorrhage: early treatment reduces mortality and influences hippocampal protein expression. Crit Care Med. 2016; 44 (7): e520–9. DOI: 10.1097/CCM.0000000000001561. PMID: 26751611

16. Zhuang L., Yang T., Zhao H., Fidalgo A.R., Vizcaychipi M.P., Sanders R.D., Yu B., Takata M., Johnson M.R., Ma D. The protective profile of argon, helium, and xenon in a model of neonatal asphyxia in rats. Crit Care Med 2012; 40 (6): 1724–1730. DOI: 10.1097/CCM.0b013e3182452164. PMID: 22610177

17. Fahlenkamp A.V., Coburn M., de Prada A., Gereitzig N., Beyer C., Haase H., Rossaint R., Gempt J., Ryang Y-M. Expression analysis following argon treatment in an in vivo model of transient middle cerebral artery occlusion in rats. Med Gas Res. 2014; 4: 11. DOI: 10.1186/2045-9912-4-11. PMID: 25671080

18. Ulbrich F, Schallner N, Coburn M, Loop T, Lagrèze WA, Biermann J, Goebel U. Argon inhalation attenuates retinal apoptosis after ischemia/reperfusion injury in a time- and dose-dependent manner in rats. PLoS One. 2014; 9 (12): e115984. DOI: 10.1371/journal.pone.0115984. PMID: 25535961

19. Ulbrich F, Kaufmann KB, Coburn M, Lagreze WA, Roesslein M, Biermann J, Buerkle H, Loop T, Goebel U. Neuroprotective effects of Argon are mediated via an ERK1/2 dependent regulation of hemeoxygenase-1 in retinal ganglion cells. J Neurochem. 2015; 134 (4): 717–727. DOI: 10.1111/jnc.13115. PMID: 25876941

20. Abraini J.H., Kriem B., Balon N., Rostain J-C., Risso J-J. Gammaaminobutyric acid neuropharmacological investigations on narcosis produced by nitrogen, argon, or nitrous oxide. Anesth Analg. 2003; 96 (3): 746–749. DOI: 10.1213/01.ANE.0000050282.14291.38. PMID: 12598256

21. Faure A., Bruzzese L., Steinberg J.G., Jammes Y., Torrents J., Berdah S.V., Garnier E., Legris T., Loundou A., Chalopin M., Magalon G., Guieu R., Fenouillet E., Lechevallier E. Effectiveness of pure argon for renal transplant preservation in a preclinical pig model of heterotopic autotransplantation. J Transl Med. 2016; 14: 40. DOI: 10.1186/s12967-016-0795-y. PMID: 26847569

22. Liu J., Nolte K., Brook G., Liebenstund L., Weinandy A., Höllig A., Veldeman M., Willuweit A., Langen K.J., Rossaint R., Coburn M. Poststroke treatment with argon attenuated brain injury, reduced brain inflammation and enhanced M2 microglia/macrophage polarization: a randomized controlled animal study. Crit Care. 2019; 23 (1): 198. DOI: 10.1186/s13054-019-2493-7. PMID: 31159847

23. De Roux Q., Lidouren F., Kudela A., Slassi L., Kohlhauer M., Boissady E., Chalopin M., Farjot G., Billoet C., Bruneval P., Ghaleh B., Mongardon N., Tissier R. Argon attenuates multiorgan failure in relation with HMGB1 inhibition. Int J Mol Sci. 2021; 22 (6): 3257. DOI: 10.3390/ijms22063257. PMID: 33806919

24. Qi H., Soto-Gonzalez L., Krychtiuk K.A., Ruhittel S., Kaun C., Speidl W.S., Kiss A., Podesser B.K., Yao S., Markstaller K., Klein K.U., Tretter V. Pretreatment with argon protects human cardiac myocyte-like progenitor cells from oxygen glucose deprivation-induced cell death by activation of AKT and differential regulation of mapkinases. Shock. 2018; 49 (5): 556–563. DOI: 10.1097/SHK.0000000000000998. PMID: 29658909

25. David H.N., Dhilly M., Degoulet M., Poisnel G., Meckler C., Vallée N., Blatteau J.É., Risso J.J., Lemaire M., Debruyne D., Abraini J.H. Argon blocks the expression of locomotor sensitization to amphetamine through antagonism at the vesicular monoamine transporter-2 and mu-opioid receptor in the nucleus accumbens. Transl Psychiatry. 2015; 5 (7): e594. DOI: 10.1038/tp.2015.27. PMID: 26151922

26. Grüßer L., Blaumeiser-Debarry R., Krings M., Kremer B., Höllig A., Rossaint R., Coburn M. Argon attenuates the emergence of secondary injury after traumatic brain injury within a 2-hour incubation period compared to desflurane: an in vitro study. Med Gas Res 2017; 7 (2): 93–100. DOI: 10.4103/2045-9912.208512. PMID: 28744361

27. Moro F., Fossi F., Magliocca A., Pascente R., Sammali E., Baldini F., Tolomeo D., Micotti E., Citerio G., Stocchetti N., Fumagalli F., Magnoni S., Latini R., Ristagno G., Zanier E.R. Efficacy of acute administration of inhaled argon on traumatic brain injury in mice. Br J Anaesth. 2020; 126 (1): 256–264. DOI: 10.1016/j.bja.2020.08.027. PMID: 32977957

28. Creed J., Cantillana-Riquelme V., Yan B.H., Ma S., Chu D., Wang H., Turner D.A., Laskowitz D.T., Hoffmann U. Argon inhalation for 24 h after closed-head injury does not improve recovery, neuroinflammation, or neurologic outcome in mice. Neurocrit Care. 2021; 34 (3): 833-843. DOI: 10.1007/s12028-020-01104-0. PMID: 32959200

29. Koziakova M., Harris K., Edge C.J., Franks N.P., White I.L., Dickinson R. Noble gas neuroprotection: xenon and argon protect against hypoxic-ischaemic injury in rat hippocampus in vitro via distinct mechanisms. Br J Anaesth. 2019; 123 (5): 601–609. DOI: 10.1016/j.bja.2019.07.010. PMID: 31470983

30. Savary G., Lidouren F., Rambaud J., Kohlhauer M., Hauet T., Bruneval P., Costes B., Cariou A., Ghaleh B., Mongardon N., Tissier R. Argon attenuates multiorgan failure following experimental aortic crossclamping. Br J Clin Pharmacol. 2018; 84 (6): 1170–1179. DOI: 10.1111/bcp.13535. PMID: 29388238

31. Wang Y-Z., Li T-T., Cao H-L., Yang W-C. Recent advances in the neuroprotective effects of medical gases. Med Gas Res. 2019; 9 (2): 80–87. DOI: 10.4103/2045-9912.260649. PMID: 31249256

32. Zhang J., Liu W., Bi M., Xu J., Yang H., Zhang Y. Noble gases therapy in cardiocerebrovascular diseases: the novel stars? Front Cardiovasc Med. 2022; 9: 802783. DOI: 10.3389/fcvm.2022.802783. PMID: 35369316

33. Edge C.J., Dickinson R. Argon: a noble, but not inert, treatment for brain trauma? Br J Anaesth. 2021; 126 (1): 41–43. DOI: 10.1016/j.bja.2020.09.028. PMID: 33097180

34. Schneider F.I., Krieg S.M., Lindauer U., Stoffel M., Ryang Y-M. Neuroprotective effects of the inert gas argon on experimental traumatic brain injury in vivo with the controlled cortical impact model in mice. Biology (Basel). 2022; 11 (2): 158. DOI: 10.3390/biology11020158. PMID: 35205025

35. Greenwood A., Evans J., Smit E. New brain protection strategies for infants with hypoxic-ischaemic encephalopathy. Paediatrics and Child Health. 2018; 28 (9): 405–411. ISSN 1751-7222. DOI: 10.1016/j.paed.2018.06.004

36. De Giorgio D., Magliocca A., Fumagalli F., Novelli D., Olivari D., Staszewsky L., Latini R., Ristagno G. Ventilation with the noble gas argon in an in vivo model of idiopathic pulmonary arterial hypertension in rats. Med Gas Res. 2021; 11 (3): 124–125. DOI: 10.4103/2045-9912.314333. PMID: 33942784

37. Suleiman S., Klassen S., Katz I., Balakirski G., Krabbe J., von Stillfried S., Kintsler S., Braunschweig T., Babendreyer A., Spillner J., Kalverkamp S., Schröder T., Moeller M., Coburn M., Uhlig S., Martin C., Rieg A.D. Argon reduces the pulmonary vascular tone in rats and humans by GABA-receptor activation. Sci Rep. 2019; 9 (1): 1902. DOI: 10.1038/s41598-018-38267-y. PMID: 30760775

38. Le Nogue, D., Lavaur, J., Milet, A., Ramirez-Gil J-F., Katz I., Lemaire M., Farjot G., Hirsch E.C., Michel P.P. Neuroprotection of dopamine neurons by xenon against low-level excitotoxic insults is not reproduced by other noble gases. J Neural Transm (Vienna). 2020; 127 (1): 27–34 DOI: 10.1007/s00702-019-02112-x. PMID: 31807953

39. Kundu S.K., Chakraborty C., Yagihara S., Teoh S.L., Das S. Anesthetic molecule interaction of noble gases with proteins and lipids and their effect: a review. Curr Drug Deliv. 2018; 15 (10): 1381–1392. DOI: 10.2174/1567201815666180820101255. PMID: 30124152

40. Htun Y., Nakamura S., Kusaka T. Hydrogen and therapeutic gases for neonatal hypoxic-ischemic encephalopathy: potential neuroprotective adjuncts in translational research. Pediatr Res. 2021; 89 (4): 753–759. DOI: 10.1038/s41390-020-0998-z. PMID: 32505123

41. Solevåg A.L., Schmölzer G.M., Cheung P.Y. Novel interventions to reduce oxidative-stress related brain injury in neonatal asphyxia. Free Radic Biol Med. 2019; 142: 113–122. DOI: 10.1016/j.freeradbiomed.2019.04.028. PMID: 31039399

42. Nair S.G. Argon: the future organ protectant? Ann Card Anaesth. 2019; 22 (2): 111–112. DOI: 10.4103/aca.ACA_180_18. PMID: 30971590

43. Moher D., Liberati A., Tetzlaff J., Altman D.G., PRISMA Group. Preferred reporting items for systematic reviews and meta-analyses: the PRISMA statement. PLoS Med. 2009; 6 (7): e1000097. DOI: 10.1371/journal.pmed.1000097. PMID: 19621072

44. Alshami A., Einav S., Skrifvars M.B., Varon J. Administration of inhaled noble and other gases after cardiopulmonary resuscitation: a systematic review. Am J Emerg Med. 2020; 38 (10): 2179–2184. DOI: 10.1016/j.ajem.2020.06.066. PMID: 33071073

45. Rohel A., Rossaint R., Coburn M. Update of the organoprotective properties of xenon and argon: from bench to beside. Intensive Care Med Exp. 2020; 8 (1): 11. DOI: 10.1186/s40635-020-0294-6. PMID: 32096000

46. Deng R-M., Li H-Y., Li X., Shen H-T., Wu D-G., Wang Z., Chen G. Neuroprotective effect of helium after neonatal hypoxic ischemia: a narrative review. Med Gas Res. 2021; 11 (3): 121–123. DOI: 10.4103/2045-9912.314332. PMID: 33942783.

47. Gardner A.J., Menon D.K. Moving to human trials for argon neuroprotection in neurological injury: a narrative review. Br J Anaesth. 2018; 120 (3): 453-468. DOI: 10.1016/j.bja.2017.10.017. PMID: 29452802

48. Höllig A., Coburn M. Noble gases and neuroprotection: summary of current evidence. Curr Opin Anaesthesiol. 2021; 34 (5): 603–606. DOI: 10.1097/ACO.0000000000001033. PMID: 34224430

49. De Deken J., Rex S., Lerut E., Martinet W., Monbaliu D., Pirenne J., Jochmans I. Postconditioning effects of argon or xenon on early graft function in a porcine model of kidney autotransplantation. Br J Surg. 2018; 105 (8): 1051–1060. DOI: 10.1002/bjs.10796. PMID: 29603122

50. Magliocca A., Fries M. Inhaled gases as novel neuroprotective therapies in the postcardiac arrest period. Curr Opin Crit Care. 2021; 27 (3): 255–260. DOI: 10.1097/MCC.0000000000000820. PMID: 33769417

51. Shin S.S, Hwang M., Diaz-Arrastia R., Kilbaugh T.J. Inhalational gases for neuroprotection in traumatic brain injury. J Neurotrauma. 2021; 38 (19): 2634–2651. DOI: 10.1089/neu.2021.0053. PMID: 33940933.

52. Diao M-Y., Zhu Y., Yang J., Xi S-S., Wen X., Gu Q., Hu W. Hypothermia protects neurons against ischemia/reperfusion-induced pyroptosis via m6A-mediated activation of PTEN and the PI3K/Akt/GSK-3β signaling pathway. Brain Res Bull. 2020; 159: 25-31. DOI: 10.1016/j.brainresbull.2020.03.011. PMID: 32200003

53. Fu X., Zhong X., Chen X., Yang D., Zhou Z., Liu Y. GSK-3β activates NF-κB to aggravate caerulein-induced early acute pancreatitis in mice. Ann Transl Med. 2021; 9 (22): 1695. DOI: 10.21037/atm-21-5701. PMID: 34988204

54. Кузовлев А.Н., Шпичко А.И., Рыжков И.А., Гребенчиков О.А., Шабанов А.К., Хусаинов Ш.Ж., Цоколаева, З. И., Лобанов А.В. Влияние ксенона на фосфорилирование киназы гликогенсинтазы-3β и антиоксидантные ферменты в мозге крыс. Журнал им. Н.В. Склифосовского Неотложная медицинская помощь. 2020; 9 (4): 564–572. DOI.10.23934/2223-9022-2020-9-4-564-57213

55. Filev A.D., Silachev D.N., Ryzhkov I.A., Lapin K.N., Babkina A.S., Grebenchikov O.A., Pisarev V.M. Effect of xenon treatment on gene expression in brain tissue after traumatic brain injury in rats. Brain Sci. 2021; 11 (7): 889. DOI: 10.3390/brainsci11070889. PMID: 34356124;

56. Черпаков Р.А., Гребенчиков О.А. Влияние концентрации хлорида лития на его нейропротекторные свойства при ишемическом инсульте у крыс. Общая реаниматология. 2021; 17 (5): 101–110. DOI: 10.15360/1813-9779-2021-5-101-110

57. Jawad N., Rizvi M., Gu J., Adeyi O., Tao G., Maze M., Ma D. Neuroprotection (and lack of neuroprotection) afforded by a series of noble gases in an in vitro model of neuronal injury. Neurosci Lett. 2009; 460 (3): 232–236. DOI: 10.1016/j.neulet.2009.05.069. PMID: 19500647

58. Ma S., Chu D., Li L., Creed J.A., Ryang Y-M., Sheng H., Yang W., Warner D.S., Turner D.A., Hoffmann U. Argon inhalation for 24 hours after onset of permanent focal cerebral ischemia in rats provides neuroprotection and improves neurologic outcome. Crit Care Med. 2019 47 (8): e693–e699. DOI: 10.1097/CCM.0000000000003809. PMID: 31094741

59. Kremer B, Coburn M, Weinandy A, Nolte K, Clusmann H, Veldeman M, Höllig A. Argon treatment after experimental subarachnoid hemorrhage: evaluation of microglial activation and neuronal survival as a subanalysis of a randomized controlled animal trial. Med Gas Res. 2020; 10 (3): 103–109. DOI: 10.4103/2045-9912.296039. PMID: 33004706

60. Brücken A, Kurnaz P, Bleilevens C, Derwall M, Weis J, Nolte K, Rossaint R., Fries M. Delayed argon administration provides robust protection against cardiac arrest-induced neurological damage. Neurocrit Care. 2015; 22: 112–2. DOI: 10.1007/s12028-014-0029-1. PMID: 25081369

61. Zuercher P., Springe D., Grandgirard D., Leib S.L., Grossholz M., Jakob S., Takala J., Haenggi M. A randomized trial of the effects of the noble gases helium and argon on neuroprotection in a rodent cardiac arrest model. BMC Neurol. 2016; 16: 43. DOI: 10.1186/s12883-016-0565-8. PMID: 27044425

62. Fumagalli F., Olivari D., Boccardo A., De Giorgio D., Affatato R., Ceriani S., Bariselli S., Sala G., Cucino A., Zani D., Novelli D., Babini G., Magliocca A., Russo I., Staszewsky L., Salio M., Lucchetti J., Maisano A.M., Fiordaliso F., Furlan R., Gobbi M., Luini M.V., Pravettoni D., Scanziani E., Belloli A., Latini R., Ristagno G. Ventilation with argon improves survival with good neurological recovery after prolonged untreated cardiac arrest in pigs. J Am Heart Assoc. 2020; 9 (24): e016494. DOI: 10.1161/JAHA.120.016494. PMID: 33289464

63. Ristagno G., Fumagalli F., Russo I., Tantillo S., Zani D.D., Locatelli V., De Maglie M., Novelli D., Staszewsky L., Vago T., Belloli A., Di Giancamillo M., Fries M., Masson S., Scanziani E., Latini R. Postresuscitation treatment with argon improves early neurological recovery in a porcine model of cardiac arrest. Shock. 2014; 41 (1): 72–78. DOI: 10.1097/SHK.0000000000000049. PMID: 24088999

64. Loetscher P.D., Rossaint J., Rossaint R., Weis J., Fries M., Fahlenkamp A., Ryang Y-M, Grottke O., Coburn M. Argon: neuroprotection in in vitro models of cerebral ischemia and traumatic brain injury. Crit Care 2009; 13 (6): R206. DOI: 10.1186/cc8214. PMID: 20017934

65. Alderliesten T., Favie L.M., Neijzen R.W., Auwärter V., Nijboer C.H,. Marges R.E., Rademaker C.M., Kempf J., van Bel F., Groenendaal F. Neuroprotection by argon ventilation after perinatal asphyxia: a safety study in newborn piglets. PLoS One 2014; 9 (12): e113575. DOI: 10.1371/journal.pone.0113575. PMID: 25460166

66. Broad K.D., Fierens I., Fleiss B., Rocha-Ferreira E., Ezzati M., Hassell J., Alonso-Alconada D., Bainbridge A., Kawano G., Ma D., Tachtsidis I., Gressens P., Golay X., Sanders R.D., Robertson N.J. Inhaled 45–50% argon augments hypothermic brain protection in a piglet model of perinatal asphyxia. Neurobiol Dis. 2016; 87: 29–38. DOI: 10.1016/j.nbd.2015.12.001. PMID: 26687546

67. Zhao H., Luo X., Zhou Z., Liu J., Tralau-Stewart C., George A.J.T., Ma D. Early treatment with xenon protects against the cold ischemia associated with chronic allograft nephropathy in rats. Kidney Int. 2014; 85 (1): 112–123. DOI: 10.1038/ki.2013.334. PMID: 24025645

68. Soo E., Marsh C., Steiner R., Stocks L., McKay D.B. Optimizing organs for transplantation; advancements in perfusion and preservation methods. Transplant Rev (Orlando). 2020; 34 (1): 100514. DOI: 10.1016/j.trre.2019.100514. PMID: 31645271

69. Irani Y., Pype J.L., Martin A.R., Chong C.F., Daniel L., Gaudart J., Ibrahim Z., Magalon G., Lemaire M., Hardwigsen J. Noble gas (argon and xenon)-saturated cold storage solutions reduce ischemia-reperfusion injury in a rat model of renal transplantation. Nephron Extra. 2011; 1 (1): 272–282. DOI: 10.1159/000335197. PMID: 22470401

70. Kiss A., Shu H., Hamza O., Santer D., Tretter E.V., Yao S., Markstaller K., Hallström S., Podesser B.K., Klein K.U. Argon preconditioning enhances postischaemic cardiac functional recovery following cardioplegic arrest and global cold ischaemia. Eur J Cardiothorac Surg. 2018; 54 (3): 539–546. DOI: 0.1093/ejcts/ezy104. PMID: 29547976

71. Westenberger G., Sellers J., Fernando S., Junkins S., Han S.M., Min K., Lawan A. Function of mitogen-activated protein kinases in hepatic inflammation. J Cell Signal. 2021; 2 (3): 172–180. PMID: 34557866

72. Lin Y., Xu Y., Zhang Z. Sepsis-induced myocardial dysfunction (SIMD): the pathophysiological mechanisms and therapeutic strategies targeting mitochondria. Inflammation. 2020; 43 (4): 1184–1200. DOI: 10.1007/s10753-020-01233-w. PMID: 32333359

73. Liu X., Wei B., Bi Q., Sun Q., Li L., He J., Weng Y., Zhang S., Mao G., Bao Y., Wan S., Shen X.Z., Yan J., Shi P. MPTP-induced impairment of cardiovascular function. Neurotox Res. 2020; 38 (1): 27–37. DOI: 10.1007/s12640-020-00182-4. PMID: 32198706

74. Chen M.W., Santos P., Kulikowicz E., Koehler R.C., Lee J.K., Martin L.J. Targeting the mitochondrial permeability transition pore for neuroprotection in a piglet model of neonatal hypoxic-ischemic encephalopathy. J Neurosci Res. 2021; 99 (6): 1550–1564. DOI: 10.1002/jnr.24821. PMID: 33675112

75. Schauer A., Barthel P., Adams V., Linke A., Poitz D.M., Weinbrenner C. Pharmacological pre- and postconditioning with levosimendan protect H9c2 cardiomyoblasts from anoxia/reoxygenation-induced cell death via PI3K/Akt signaling. J Cardiovasc Pharmacol. 2021; 77 (3): 378–385. DOI: 10.1097/FJC.0000000000000969. PMID: 33662980

76. Raupach A., Reinle J., Stroethoff M., Mathes A., Heinen A., Hollmann M.W., Huhn R., Bunte S. Milrinone-induced pharmacological preconditioning in cardioprotection: hints for a role of mitochondrial mechanisms. J Clin Med. 2019; 8 (4): 507. DOI: 10.3390/jcm8040507. PMID: 31013843

77. Intachai K., C. Chattipakorn S.C., Chattipakorn N., Shinlapawittayatorn K. Revisiting the cardioprotective effects of acetylcholine receptor activation against myocardial ischemia/reperfusion injury. Intl J Mol Sci. 2018; 19 (9): 2466. DOI: 10.3390/ijms19092466. PMID: 30134547

78. Rout A., Tantry U.S., Novakovic M., Sukhi A., Gurbel P.A. Targeted pharmacotherapy for ischemia reperfusion injury in acute myocardial infarction. Expert Opin Pharmacother. 2020; 21 (15): 1851–1865. DOI: 10.1080/14656566.2020.1787987. PMID: 32659185

79. Shanmugam K., Boovarahan S.R., Prem P, Sivakumar B., Kurian G.A. Fisetin attenuates myocardial ischemia-reperfusion injury by activating the reperfusion injury salvage kinase (RISK) signaling pathway. Front Pharmacol. 2021; 12: 566470. DOI: 10.3389/fphar.2021.566470. PMID: 33762932

80. Yang X., Yue R., Zhang J., Zhang X., Liu Y., Chen C., Wang X., Luo H., Wang W.E., Chen X., Wang H.J., Jose P.A., Wang H., Zeng C. Gastrin protects against myocardial ischemia/reperfusion injury via activation of RISK (Reperfusion Injury Salvage Kinase) and SAFE (Survivor Activating Factor Enhancement) pathways. J Am Heart Assoc. 2018; 7 (14): e005171. DOI: 10.1161/JAHA.116.005171. PMID: 30005556

81. Ma H., Hao J., Liu H., Yin J., Qiang M., Liu M., He S., Zeng D., Liu X., Lian C., Gao Y. Peoniflorin preconditioning protects against myocardial ischemia/reperfusion injury through inhibiting myocardial apoptosis: RISK pathway involved. Appl Biochem Biotechnol. 2022; 194 (3): 1149–1165. DOI: 10.1007/s12010-021-03680-z. PMID: 34596828

82. Li J., Jia Z., Zhang Q., Dai J., Kong J., Fan Z., Li G. Inhibition of ERK1/2 phosphorylation attenuates spinal cord injury induced astrocyte activation and inflammation through negatively regulating aquaporin-4 in rats. Brain Res Bull. 2021; 170: 162–173. DOI: 10.1016/j.brainresbull.2021.02.014. PMID: 33592275

83. Xiao K., Liu P., Yan P., Liu Y, Song L., Liu Y., Xie L. N6-methyladenosine reader YTH N6-methyladenosine RNA binding protein 3 or insulin like growth factor 2 mRNA binding protein 2 knockdown protects human bronchial epithelial cells from hypoxia/reoxygenation injury by inactivating p38 MAPK, AKT, ERK1/2, and NF-κB pathways. Bioengineered. 2022; 13 (5): 11973-11986. DOI: 10.1080/21655979.2021.1999550. PMID: 34709120

84. Li J., Fu X., Cao S., Li J., Xing S., Li D., Dong Y., Cardin D., Park H.W., Mauvais-Jarvis F., Zhang H. Membrane-associated androgen receptor (AR) potentiates its transcriptional activities by activating heat shock protein 27 (HSP27). J Biol Chem. 2018; 293 (33): 12719–12729. DOI: 10.1074/jbc.RA118.003075. PMID: 29934310

85. Fawzy M.A., Maher S.A., Bakkar S.M., El-Rehany M.A., Fathy M. Pantoprazole attenuates MAPK (ERK1/2, JNK, p38)-NF-κB and apoptosis signaling pathways after renal ischemia/reperfusion injury in rats. Int J Mol Sci. 2021; 22 (19): 10669. DOI: 10.3390/ijms221910669. PMID: 34639009

86. Zhao Z., Zhang Y., Wang C., Wang X., Wang Y., Zhang H. Angiotensin II upregulates RANKL/NFATC1 expression in synovial cells from patients with rheumatoid arthritis through the ERK1/2 and JNK pathways. J Orthop Surg Res. 2021; 16 (1): 297. DOI: 10.1186/s13018-021-02451-0. PMID: 33952303

87. Ouyang W., Frucht D.M. Erk1/2 inactivation-induced c-Jun degradation is regulated by protein phosphatases, UBE2d3, and the C-terminus of c-Jun. Int J Mol Sci. 2021; 22 (8): 3889. DOI: 10.3390/ijms22083889. PMID: 33918729

88. Goebel U., Scheid S., Spassov S., Schallner N., Wollborn J., Buerkle H., Ulbrich F. Argon reduces microglial activation and inflammatory cytokine expression in retinal ischemia/reperfusion injury. Neural Regen Res. 2021; 16 (1): 192-198. DOI: 10.4103/1673-5374.290098. PMID: 32788476

89. Kimura M., Oda Y., Hirose Y., Kimura H., Yoshino K., Niitsu T., Kanahara N., Shirayama Y., Hashimoto K., Iyo M. Upregulation of heat-shock protein HSP-70 and glutamate transporter-1/glutamine synthetase in the striatum and hippocampus in haloperidol-induced dopamine-supersensitivity-state rats. Pharmacol Biochem Behav. 2021; 211: 173288. DOI: 10.1016/j.pbb.2021.173288. PMID: 34653399

90. Rastogi S., Haldar C. Role of melatonin and HSF-1HSP-70 in modulating cold stress-induced immunosuppression in a tropical rodent- Funambulus pennanti. J Therm Biol. 2020; 87: 102456. DOI: 10.1016/j.jtherbio.2019.102456. PMID: 32001016

91. Schmitz S.M., Dohmeier H., Stoppe C., Alizai P.H., Schipper S., Neumann U.P., Coburn M., Ulmer T.F. Inhaled argon impedes hepatic regeneration after ischemia/reperfusion injury in rats. Int J Mol Sci. 2020 ; 21 (15): 5457. DOI: 10.3390/ijms21155457. PMID: 32751707

92. Teng W., Fan J., Zhang W.X. Iron-catalyzed selective denitrification over N-doped mesoporous carbon. ACS Appl Mater Interfaces. 2020; 12 (25): 28091–28099. DOI: 10.1021/acsami.0c03953. PMID: 32413255

93. Bickels J., Campanacci D.A. Local adjuvant substances following curettage of bone tumors. J Bone Joint Surg Am. 2020; 102 (2): 164–174. DOI: 10.2106/JBJS.19.00470. PMID: 31613863

94. Ismail M., Nielsen T.K., Lagerveld B., Garnon J., Breen D, King A., van Strijen M., Keeley F.X. Jr. Renal cryoablation: multidisciplinary, collaborative and perspective approach. Cryobiology. 2018; 83: 90–94. DOI: 10.1016/j.cryobiol.2018.06.002. PMID: 29890126

95. Lundell R.V., Wuorimaa T., Räisänen-Sokolowski A., Sundholm J.K., Rintamäki H., Rissanen S., Parkkola K. Comparison of argon and air as thermal insulating gases in drysuit dives during military Arctic diving equipment development tests. Undersea Hyperb Med. 2019; 46 (4): 429–435. PMID: 31509899

96. Nycz M., Paradowska E., Arkusz K., Pijanowska D.G. Influence of geometry and annealing temperature in argon atmosphere of TiO₂ nanotubes on their electrochemical properties. Acta Bioeng Biomech. 2020; 22 (1): 165–177. PMID: 32307458

97. Tan Y.W., Ye Y., Sun L. Argon-helium cryoablation for thoracic vertebrae with metastasis of hepatocellular carcinoma-related hepatitis B: a case report. World J Clin Cases. 2020; 8 (2): 377–381. DOI: 10.12998/wjcc.v8.i2.377. PMID: 32047788

98. Ning J., Zhao H., Chen B., Mi E.Z., Yang Z., Qing W., Lam K.W.J., Yi B., Chen Q., Gu J., Ichim T. Bogin V., Lu K. Ma D. Argon mitigates impaired wound healing process and enhances wound healing in vitro and in vivo. Theranostics. 2019; 9 (2): 477–490. DOI: 10.7150/thno.29361. PMID: 30809288

99. Li X., Zhang Z.W., Wang Z., Li J.Q., Chen G. The role of argon in stroke. Med Gas Res. 2018; 8 (2): 64–66. DOI: 10.4103/2045-9912.235129. PMID: 30112168

100. Murgu S., Laxmanan B., Stoy S., Egressy K., Chaddha U., Farooqui F., Brunner R., Hogarth K., Chaney M. Evaluation of safety and shortterm outcomes of therapeutic rigid bronchoscopy using total intravenous anesthesia and spontaneous assisted ventilation. Respiration. 2020; 99 (3): 239–247. DOI: 10.1159/000504679. PMID: 31851991

101. Material safety data sheet gaseous argon, Universal Industrial Gases, Inc. Available from: http://www.uigi.com/MSDS_gaseous_Ar.html. [Revision Date: April 25, 2015].

102. Nespoli F., Redaelli S., Ruggeri L., Fumagalli F., Olivari D., Ristagno G. A complete review of preclinical and clinical uses of the noble gas argon: evidence of safety and protection. Ann Card Anaesth. 2019; 22 (2): 122–135. DOI: 10.4103/aca.ACA_111_18. PMID: 30971592

103. Cucino A., Ruggeri L., Olivari D., De Giorgio D., Latini R., Ristagno G. Safety of ventilation with an argon and oxygen gas mixture. Br J Anaesth. 2019; 122 (2): e31–e32. DOI: 10.1016/j.bja.2018.11.010. PMID: 30686325

104. Campos-Pires R., Koziakova M., Yonis A.Y., Pau A., Macdonald W., Harris K., Edge C.J., Franks N.P., Mahoney P.F., Dickinson R. Xenon protects against blast-induced traumatic brain injury in an in vitro model. J Neurotrauma. 2018; 35 (8): 1037–1044. DOI: 10.1089/neu.2017.5360. PMID: 29285980

105. Campos-Pires R., Hirnet T., Valeo F., Ong B.E., Radyushkin K.A., Aldhoun J., Saville J., Edge C.J., Franks N.P., Thal S.C., Dickinson R. Xenon improves long-term cognitive function, reduces neuronal loss and chronic neuroinflammation, and improves survival after traumatic brain injury in mice. Br J Anaesth. 2019; 123 (1): 60–73. DOI: 10.1016/j.bja.2019.02.032. PMID: 31122738

106. Filev A.D., Silachev D.N., Ryzhkov I.A., Lapin K.N., Babkina A.S., Grebenchikov O.A., Pisarev V.M. Effect of xenon treatment on gene expression in brain tissue after traumatic brain injury in rats. Brain Sci. 2021: 11 (7); 889. DOI: 10.3390/brainsci11070889. PMID: 34356124

107. Moro F., Fossi F., Magliocca A., Pascente R., Sammali E., Baldini F., Tolomeo D., Micotti E., Citerio G., Stocchetti N., Fumagalli F., Magnoni S., Latini R., Ristagno G., Zanier E.R. Efficacy of acute administration of inhaled argon on traumatic brain injury in mice. Br J Anaesth. 2021; 126 (1): 256–264. DOI: 10.1016/j.bja.2020.08.027. PMID: 32977957

108. Zhang M., Cui Y., Cheng Y., Wang Q., Sun H. The neuroprotective effect and possible therapeutic application of xenon in neurological diseases. J Neurosci Res. 2021; 99 (12): 3274–3283. DOI: 10.1002/jnr.24958. PMID: 34716615

109. Maze M., Laitio T. Neuroprotective properties of xenon. Mol Neurobiol. 2020 Jan; 57 (1): 118–124. DOI: 10.1007/s12035-019-01761-z. PMID: 31758401

110. Wang J., Li R. Peng Z., Hu B., Rao X., Li J. HMGB1 participates in LPS-induced acute lung injury by activating the AIM2 inflammasome in macrophages and inducing polarization of M1 macrophages via TLR2, TLR4, and RAGE/NF-κB signaling pathways. Int J Mol Med. 2020; 45 (1): 61-80. DOI: 10.3892/ijmm.2019.4402. PMID: 31746367

111. Zewinger S., Reiser J., Jankowski V., Alansary D., Hahm E., Triem S,. Klug M., Schunk S.J., Schmit D., Kramann R., Körbel C., Ampofo E., Laschke M.W., Selejan S.R., Paschen A., Herter T., Schuster S., Silbernagel G., Sester M., Sester U., Aßmann G., Bals R., Kostner G., Jahnen-Dechent W., Menger M.D., Rohrer L., März W., Böhm M., Jankowski J., Kopf M., Latz E., Niemeyer B.A., Fliser D., Laufs U., Speer T. Apolipoprotein C3 induces inflammation and organ damage by alternative inflammasome activation. Nat Immunol. 2020; 21 (1): 30-41. DOI: 10.1038/s41590-019-0548-1. PMID: 31819254.

112. Mitsui Y., Hou L., Huang X., Odegard K.C., Pereira L.M., Yuki K. Volatile anesthetic sevoflurane attenuates toll-like receptor1/2 activation. Anesth Analg. 2020; 131 (2): 631–639. DOI: 10.1213/ANE.0000000000004741. PMID: 32149756.

Некоторые газы называются инертными и не реагируют на воздействие иных химических веществ. Из них нельзя синтезировать какое-то химическое соединение. Тем не менее, такие газы используют в промышленности, где актуальны их физические свойства. Один из инертных газов — аргон. В этой статье мы расскажем о характеристиках газа аргона, областях применения. Поясним, что это такое — газ аргон в химии и физике. Расскажем, какое давление в баллоне аргона поддерживается. Эта информация поможет вам лучше понять, в каких целях, каким образом с какими ограничениями вы можете использовать этот технический газ на вашем предприятии или в быту.

Ключевые свойства:

• Плотность: 1,784 кг/м³.
• Температура закипания: −185,8 ˚С.
• Доля в воздушной массе: 0,9% объёма.
• Тройная точка: −189,8 ˚С.

В воде это вещество почти не растворяется, не поддерживает горение. Аргон не ядовит, например, при сварке средства защиты от этого газа не нужны.

Картинка с сайта: tantal-d.ru

История открытия aргона

Первооткрыватели — Джон Стретт и Вильям Рамзай. Они обнаружили включение аргона, исследуя азот. Его они прежде получили из воздуха в ходе химических реакций. При разных способах извлечения азот приобретал различную плотность. Поэтому ученые заподозрили присутствие инертного газа. Его они выделили в 1894 году. Значение слова argon — «ленивый», что отражает неактивность вещества в отношении других элементов.

Способы получения аргона

В значительном объеме газ содержится в воздухе. Поэтому его выделяют из воздушной массы с помощью низкотемпературных ректификационных установок. Этот процесс протекает в несколько этапов:

1. Воздух очищают от пылевых частиц, сжимают до получения жидкости.
2. В жидком виде воздух из азота, кислорода, аргона ректифицируют.
3. Отделив азот, смесь кислорода и аргона подвергают очистке, используя электролитический водород.

В ректификационной установке инертный газ кипит при −185,3˚С, кислород — на три градуса выше, азот — на тринадцать ниже.

Аргон также получают в процессах производства как побочный продукт. Его извлекают, производя аммиак. В данном случае Ar смешан с азотом и не представляет ценности, стоит намного дешевле криогенного аргона.

Физические свойства

Благородный газ весит больше воздуха, он плотнее. Его плотность 1,78 кг/м³ при 0 °С и нормальном давлении. Газ кипит при −185,85 °C. Температура жидкого аргона −190 °C.

Химические свойства

Аргон занимает 18-ю позицию в Периодической системе химических элементов. Масса его атома 39,948. Относительно объема воздуха доля газа — 0,9325% об., иначе 1,2862% вес. У аргона невысокий потенциал ионизации, равный 15,7 В. Химические соединения газ образовывает с несколькими гидридами. При нормальных условиях аргон не имеет цвета, вкуса и запаха, не горит.

Виды аргона

Обнаружены изотопы аргона с атомной массой от 29 до 54. В воздухе 3 вида изотопов Ar:

• 40 (коэффициент распространения 99,600 %);
• 36 (коэффициент распространения 0,337 %);
• 38 (коэффициент распространения 0,063 %).

Агрегатных состояний три:

• жидкость — хранится в специальных емкостях и в дальнейшем газифицируется;
• газ;
• твердое тело.

Картинка с сайта: tantal-d.ru

Применение аргона

Где используется аргон? В промышленности много сфер его применения. Например, в химических реакциях для вытеснения из вещества кислорода. Эксплуатация аргона обходится дешевле в сравнении с иными инертными газами. Он формирует защитную среду при сварке метизов, вытесняет воду и кислород в резервуарах для хранения продуктов.

Аргоном наполняют колбы осветительных приборов — ламп накаливания. С ним приборы дольше и ярче светят. Применяют аргон и при изготовлении люминесцентных ламп. С ним легче зажигается электродуга, дольше служат электроды.

Аргоном заполняют стеклопакеты для окон, чтобы повысить их звуко- и теплоизоляцию. Газ прозрачен и позволяет оконным компаниям выпускать многослойные стеклопакеты с аргоном без ущерба для их светопрозрачности.

Применяют инертный газ и при плазменной резке металлоизделий. С ним дуга возникает при небольшом напряжении, можно использовать конструктивно простые аппараты. Когда с применением аргона генерируется плазма, получают минимум вредных летучих соединений при обработке металла. Вот почему для ручных аппаратов аргон — лучший компаньон.

Аргон применяют и в медицине. С его помощью выполняют аргоновую коагуляцию, удаляют новообразования, останавливают кровотечения.

В химической промышленности с использованием аргона получают сверхчистые вещества, анализируют их. В металлургии с помощью Ar перемешивают расплавленные вещества, обрабатывают тантал, титан, цирконий, бериллий и иные металлы. Инертный газ помогает сокращать окисление хрома при выпуске покрытой хромом стали.

Применение аргона в сварке

Сваривая металлы, аргон используют для поддержания защитной среды. В случае работы с черными металлами, аргон смешивают с кислородом, двуокисью углерода, гелием, водородом.

Поскольку инертный газ тяжелее воздуха, он эффективнее защищает металлоизделия при сварочных работах. Распространяясь по поверхности метиза, аргон долго и надежно защищает обширный участок расплавленного и подогретого металла. В сварочных работах благодаря использованию аргона получают безупречный шов и повышают производительность. Шов хорошо проплавляется при одной проходке. С Ar можно применять более дешевые сварочные проволоки.

Сваривая алюминий в листах, аргон смешивают с гелием для оптимальной температуры обработки. При TIG сварке газ защищает сварочную ванну и оконечник электрода.

Картинка с сайта: tantal-d.ru

Вредность и опасность аргона

Для экологии аргон безопасен, но он принадлежит к группе удушающих газов. Он может скапливаться возле пола в плохо проветриваемых комнатах. По мере его накопления, кислорода в воздухе становится меньше, что может спровоцировать удушье. То есть в больших объемах инертный газ вредит человеку, животным.

Как жидкость аргон кипит при низкой температуре. Чистый Ar может спровоцировать обморожение, повредить слизистую глаз.

Давление аргона в баллоне

Зависимость давления аргона в баллоне от температуры воздуха

Меры предосторожности при эксплуатации

• Следует регулярно проветривать помещение, чтобы концентрация аргона в воздухе не достигала критических значений.
• Нужно защищать тело от воздействия жидкого аргона.
• Необходимо строго соблюдать требования техники безопасности при перевозке и хранении инертного газа.

Хранение и транспортировка аргона

Аргон в форме газа или жидкости поставляют, соблюдая ГОСТ 10157. Вещество хранят и перевозят в газообразной форме в емкостях согласно ГОСТ 949, при этом баллоны находятся под давлением 15 МПа. Требования к баллонам с аргоном — соответствие ГОСТ 949, серая краска снаружи, отметка полоской и меткой «АРГОН ЧИСТЫЙ» — зеленого цвета. Также на таре указывают дату изготовления и аттестации, вес, объём. Перевозят аргон и в виде жидкости в емкостях Дьюара, в дальнейшем ее газифицируют.

Очень важно соблюдать требования к баллонам, чтобы те не утратили функциональность, не возникло утечки технического газа. В закрытом пространстве она чревата удушьем. Аргоновые баллоны — в виде цилиндра, различаются объемом:

• Небольшие: 0,4 — 12 л.
• Средние: 20 — 50 л.
• Крупные: более 50 л.

Нормальное давление в емкости 150 атм. Однако, при хранении инертного газа в резервуарах по 40 л допускается давление до 200 атм.

Вверху аргонового баллона есть вентиль — его поворачивают для перекрывания подачи газа. Запорный механизм защищает от повреждений специальный колпак.

Картинка с сайта: tantal-d.ru

При транспортировке Ar нужно:

• Крепко зафиксировать тару.
• Располагать баллоны горизонтально.
• Для расположения емкостей использовать особые приспособления. Они обеспечивают более устойчивое положение тары.
• Перевозить заполненные емкости, убедившись в том, что нет утечек.

Теперь вы знаете больше о свойствах газа аргона, техническом составе вещества, где применяется аргон, температуру его замерзания и плавления, при каком давлении аргон хранят и перевозят, чтобы создать правильные условия для эксплуатации этого газа.

Компания «Тантал-Д» с 1998 года поставляет аргон и другие технические газы. Постоянным и оптовым клиентам предлагаем особые условия сотрудничества. У нас свой парк специализированного автотранспорта, при перевозках соблюдаем все требования безопасности. По Москве и Московской области доставляем заказы уже на следующий день после обращения. Оставляйте заявку на сайте или звоните, наши менеджеры ответят на все вопросы.

Читать также