Описание
Визуальное обнаружение бактерий, выросших на питательной среде при посеве исследуемых образцов.
Форма выпуска
Выпускается в полиэтиленовых банках по 150 и 200 г с инструкцией по применению, паспорт (в комплекте поставки).
Назначение
Набор реагентов «Питательная среда для выделения бактерий родов Proteus, Providencia, Morganella» предназначен для выделения бактерий родов Proteus, Providencia, Morganella из различного инфицированного материала (отделяемое ожоговых и хирургических ран, кал, моча и др.). Изделие для диагностики ин витро. Функциональное назначение — вспомогательное средство в диагностике.
Характеристика набора
Принцип метода-визуальное обнаружение бактерий, выросших на питательной среде при посеве исследуемых образцов.
Набор реагентов Питательная среда для выделения бактерий родов Proteus, Providencia, Morganella представляет собой смесь сухих компонентов, из расчета г/л::
Панкреатический гидролизат казеина — 10,0
Калий сернокислый — 10,0
Натрий лимоннокислый трехзамещенный — 10,0
Д-глюкоза — 10,0
Амфолан — 0,5
Агар микробиологический — (11,0±1,0)
Сода кальцинированная — 0,5
Выпускается в полиэтиленовых банках по 150 и 200 г с инструкцией по применению, паспорт (в комплекте поставки). Ремонту и обслуживанию не подлежит.
Чувствительность среды, скорость роста и стабильность основных биологических свойств микроорганизмов. Набор реагентов Питательная среда для выделения бактерий родов Proteus, Providencia, Morganella должна обеспечивать рост на всех засеянных чашках тест-штаммов Proteus mirabilis 3177, Providencia alcalifaciens 1035-49 из разведений 10′7и 10″6; а тест-штаммов Proteus vulgaris НХ19, Morganella morganii 1707 и Providencia rettgeri l (Титов) из разведения 10’6и 10-5 через 20-22 ч инкубации при температуре (37±1)°С в виде колоний в О-форме беловатого или голубоватого цвета диаметром 1-2 мм. Допускается Н-форма колоний Р.mirabilis 3177 и P.vulgaris НХ19; зона их «роения» должна быть не более 5 мм.
Показатель ингибиции. Питательная среда для выделения бактерий родов Proteus, Providencia, Morganella должна полностью подавлять рост тест-штаммов Esherichia coli (055:К59)3912/41, Staphylococcus aureus 209-Р, Pseudomonas aeruginosa 08 Hobs через 44-48 ч инкубации при температуре (37±1)°С на 3-х засеянных чашках Петри при посеве по 0,1 мл микробной взвеси каждого штамма в концентрации, соответствующей 10 ед. по отраслевому образцу мутности.
Меры предосторожности
Потенциальный риск применения изделия — класс 1.
При работе необходимо соблюдать правила техники безопасности в соответствии с ГОСТ Р 52905-2007 «Лаборатории медицинские. Требования безопасности», СП 1.3.2322- 08 «Безопасность работы с микроорганизмами III-IV групп патогенности (опасности) и возбудителями паразитарных болезней»; СП 1.3.2518-09 «Дополнения и изменения № 1 к СП 1.3.2322-08 «Безопасность работы с микроорганизмами III — IV групп патогенности (опасности) и возбудителями паразитарных болезней; СП 1.3.2885-11 «Дополнения и изменения № 2 к СП 1.3.2322-08 «Безопасность работы с микроорганизмами III — IV групп патогенности (опасности) и возбудителями паразитарных болезней».
Соблюдение «Правил устройства, техники безопасности производственной санитарии, противоэпидемического режима и личной гигиены при работе в лабораториях (отделениях, отделах) санитарно-эпидемиологических учреждений системы Министерства здравоохранения» (Москва, 1981 г.).
Утилизация изделий, пришедших в негодность, с истекшим сроком годности и изделий после контакта с биологическими образцами осуществляется в соответствии с требованиями СанПиН 2.1.7.2790-10 «Санитарно-эпидемиологические требования к обращению с медицинскими отходами».
Оборудование и реагенты
Термостат, обеспечивающий температуру (37+1) °С;
Автоклав;
Пробирки стеклянные;
Чашки Петри;
Вода дистиллированная;
Спиртовка;
0,9 % раствор натрия хлорида;
Пипетки;
Воронка;
Вата медицинская гигроскопическая.
Анализируемые пробы
Объекты исследований в санитарной и клинической микробиологии.
Проведение анализа
Подготовка питательной среды для использования.
Питательную среду в количестве, указанном на этикетке, размешивают в 1 л дистиллированной воды, кипятят 2 мин до полного расплавления агара, фильтруют через ватно-марлевый фильтр. Охлаждают до температуры 45-50 °С, перемешивают и разливают в стерильные чашки Петри слоем 3-4 мм, подсушивают 60-90 мин при температуре (37±1)°С, соблюдая правила асептики.
Посев исследуемого материала проводить проводить согласно приказу Минздрава СССР от 22.04.85 № 535 «Об унификации микробиологических (бактериологических) методов исследований, применяемых в клинико-диагностических лабораториях лечебнопрофилактических учреждений».
Регистрация результатов
Регистрацию результатов анализа проводят визуально, по наличию роста колоний.
Учет результатов
Учет результатов производят согласно приказу Минздрава СССР от 22.04.85 № 535 «Об унификации микробиологических (бактериологических) методов исследований, применяемых в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений».
Условия хранения и эксплуатация набора
Набор реагентов Питательная среда для выделения бактерий родов Proteus,
Providencia,Morganella необходимо хранить в герметично закрытой упаковке в сухом, защищенном от света месте при температуре от 2 до 25 °С.
Транспортирование должно проводиться при температуре от 2 до 25 °С всеми видами крытого транспорта.
Для получения надежных результатов необходимо строгое соблюдение настоящей Инструкции по применению.
Наличие: под заказ
Описание: Дифференциально-диагностическая питательная среда для выделения бактерий родов Proteus, Morganella, Providencia предназначена для использования в качестве вспомогательного средства в клинической лабораторной диагностике с целью качественного выделения из различного клинического материала (испражнения, моча, отделяемое ожоговых и хирургических ран, гной, мокрота, в редких случаях — кровь) возбудителей гнойновоспалительных заболеваний и пищевых токсикоинфекций — бактерий родов Proteus, Morganella, Providencia, а также их визуальной дифференциации по способности образовывать сероводород. Набор реагентов состоит из 1 банки с питательной средой и 5 флаконов с селективной добавкой (СД). Питательная среда представляет собой мелкодисперсный, гигроскопичный, светочувствительный порошок светло-желтого цвета (возможен розовый оттенок). СД – мелкодисперсный гигроскопичный светочувствительный порошок белого цвета. Питательная среда расфасовывается в полиэтиленовые банки по 250 г, СД — во флаконы из темного стекла по 0,011 г.
Состав питательной среды, г/л:
Панкреатический гидролизат рыбной муки сухой (ПГРМ сухой) 5,0
Пептон мясной 5,0
Дрожжевой экстракт 1,0
Натрий хлористый 4,0 D(-)
Маннит 10,0 D(+)
Мальтоза 10,0
Желчь крупного рогатого скота очищенная, сухая 6,0±2,5
Натрия тиосульфат 0,5
Железо (III) лимонноаммиачное 2,0
Кристаллический фиолетовый 0,003±0,0005
Феноловый красный 0,08
Натрий углекислый 0-0,3
Агар бактериологический 13,0±3,0
Состав СД, г/л:
Полимиксина В сульфат 0,00075
Крахмал кукурузный 0,01025
Температура хранения: от 2 до 30С
Температура при транспортировке: от 2 до 30С
Указания по применению: Навеску питательной среды в количестве, указанном на этикетке для приготовления конкретной серии, размешать в 1 л дистиллированной воды, кипятить 2 мин до полного расплавления агара. Стерилизовать автоклавированием при температуре 121С в течение 15 мин. Вскрыть флакон с селективной добавкой и растворить содержимое флакона в 5 мл стерильной дистиллированной воды, тщательно перемешать в течение 1 мин, внести в стерильную, охлажденную до температуры 50-55 С питательную среду из расчета 5 мл раствора СД на 1 л среды и разлить в стерильные чашки Петри. После застывания среды чашки подсушить. Раствор СД хранению не подлежит, использовать в день приготовления. Готовая питательная среда прозрачная красного цвета. Готовую питательную среду можно использовать в течение 14 сут после её приготовления при условии хранения при температуре 2-8С. После каждого вскрытия банку с сухой питательной средой плотно закрыть и хранить до окончания срока годности в сухом месте при температуре от 2 до 30С, избегая попадания влаги.
Проблемы медицинской микологии, 2020, Т.22, №3
Цель исследования — выявление и эпидемиологическая оценка факторов риска, определяющих формирование сочетанных форм ВИЧ-инфекции и парентеральных вирусных гепатитов в Приморском крае.
Материалы и методы. Материалом для ретроспективного эпидемиологического анализа послужила учётно-отчётная форма №2 «Сведения об инфекционной и паразитарной заболеваемости» по Приморскому краю. Проведено аналитическое эпидемиологическое исследование «случай-контроль». Для выявления влияния роли факторов риска рассчитан показатель отношение шансов (ОШ) и доверительный интервал к нему.
Результаты. Вирусные гепатиты и ВИЧ-инфекция имеют глобальное распространение и большое социальное значение. Этому способствуют единые для них парентеральный, половой и вертикальный пути передачи. В Приморском крае в структуре сочетанных форм ВИЧ-инфекции с парентеральными вирусными гепатитами в современный период значительно превалирует сочетания ВИЧ-инфекции с хроническим вирусным гепатитом С. Проанализированы истории болезней пациентов ГБУЗ «ККБ №2» (Центр по профилактике и борьбе со СПИД и инфекционными заболеваниями) и ГБУЗ «ККИБ№1» как среди имеющих сочетан-ные инфекции, так и имеющих только моноформы.
Заключение. Установлено, что ведущим фактором риска по формированию сочетанных инфекций ВИЧ и гепатит является употребление наркотиков (ОШ 126; ДИ 125,9-126,1). Отношение к группе социально-дезадаптированного населения -также значимый фактор риска по сочетанным инфекциям в Приморском крае (ОШ 73,2; ДИ 73,1-73,3). Фактор риска формирования моноинфекции ВИЧ — наличие беспорядочных незащищенных сексуальных контактов (ОШ 3,3; ДИ 3,1-3,3).
СОВРЕМЕННЫЕ ПИТАТЕЛЬНЫЕ СРЕДЫ ДЛЯ ВЫДЕЛЕНИЯ БАКТЕРИЙ РОДА PROTEUS И KLEBSIELLA
Полосенко О.В., Шепелин А.П.
Государственный научный центр прикладной микробиологии и биотехнологии, Оболенск, Россия
MODERN NUTRIENT MEDIA FOR ISOLATION OF PROTEUS AND KLEBSIELLA BACTERIA
Polosenko O.V., Shepelin A.P.
State Research Center for Applied Microbiology and Biotechnology, Obolensk, Russia
Представители семейства Enterobacteriaceae (в том числе протеи и клебси-еллы) вызывают различные гнойно-септические инфекции, при этом нередко с тяжелой клинической картиной заболеваний (клебсиеллезный сепсис). Важнейшим условием эффективности бактериологических исследований при многообразии энтеробактерий и их первичном выявлении является адекватный выбор и качество питательных сред.
Цель — изучение диагностической ценности и сравнительный анализ высокоселективных питательных сред для выделения бактерий рода Proteus и Klebsiella, используемых в современных условиях.
Материалы и методы. Исследовано 135 тест-штаммов микроорганизмов, полученных из ГКПМ-Оболенск: тест-штаммы для определения специфической активности и ингибирующих свойств питательных сред.
Результаты. Провели сравнительные исследование дифференциально-диагностических сред, традиционно применяемых в бактериологических лабораториях, и новых высокоселективных питательных сред для одноэтапного выделения и прямой идентификации бактерий рода Proteus и Klebsiella.
Сбалансированный состав дифференциально-диагностической питательной среды для выделения бактерий родов Proteus, Providencia, Morganella, дополнительно обеспечивает внутривидовую дифференциацию протеев. Наличие кристаллического фиолетового и полимиксина В ингибирует рост грамположитель-ных микроорганизмов и большинства энтеробактерий. Высокие селективные свойства дифференциально-элективной питательной среды для выделения клеб-сиелл обеспечиваются наличием карбенициллина, кристаллического фиолетового и солей желчных кислот, полученных по модифицированной отечественной технологии. В результате сравнения качества новых питательных сред по биологическим показателям на расширенном наборе тест-штаммов выявили ряд преимуществ перед традиционными средами Эндо, Плоскирева, SS-агар, при использовании которых возникали трудности при аутентификации микроорганизмов.
Заключение. Использование высокоселективных новых дифференциально-диагностических питательных сред позволит усовершенствовать методы микробиологического анализа и повысить процент положительных результатов исследований.
СРАВНИТЕЛЬНЫИ КОНТРОЛЬ САНИТАРНО-ЭПИДЕМИОЛОГИЧЕСКОГО РЕЖИМА ВОИНСКИХ ЧАСТЕЙ сухопутного и морского базирования ТИХООКЕАНСКОГО ФЛОТА ПРИМОРСКОГО КРАЯ
Пономарева А.В., Диго Р.Н., Дудченко Т.Ю.
Тихоокеанский государственный медицинский университет, Владивосток, Россия
COMPARATIVE CONTROL OF SANITARY AND EPIDEMIOLOGICAL REGIME OF MILITARY PARTS OF LAND AND SEA BASIS OF THE PACIFIC NAVY OF THE PRIMEAN REGION
Ponomareva A.V., Digo R.N., Dudchenko T.Yu.
Pacific State Médical University, Vladivostok, Russia
Цель — изучение и анализ состояния соблюдения санитарно-эпидемиологического режима по микробиологическим показателям в части А сухопутного базирования и части В морского базирования.
Материалы и методы. Исследовали пробы воздуха и смывов с объектов внешней среды в трех помещениях медицинской роты части А сухопутного базирования (далее часть А) и части В морского базирования (далее часть В) Тихоокеанского флота: в процедурном кабинете, палате №1, палате №2 медицинской роты. Общее количество взятых проб составило 60. Отбор материала и микробиологическое исследование проводили в период прохождения войсковой стажировки студентов военного учебного центра (ВУЦ). Отбор проб осуществляли однократно. Изучение микробной обсемененности объектов внешней среды выполняли в соответствии с МУК 4.2.2942 11, МУ 4.2.2039-05, Приказом Министра обороны РФ от 21 августа 2001 г. №369. Результаты оценивали согласно СанПиН 2.1.3.2630-10.
Результаты. При исследовании смывов в части А с объектов внешней среды в процедурном кабинете выявили наличие роста санитарно-показательных микроорганизмов (СПМ). В процедурном кабинете части В рост СПМ не наблюдали. В палатах медицинской роты части А и части В обнаружили рост Escherichia coli. При качественно-количественной оценке микробиоты воздуха в процедурном кабинете (1класс чистоты воздуха в ЛПУ) части А и части В отмечено превышение регламентированных показателей СанПиН 2.1.3.2630-10 по общему микробному числу (ОМЧ) и Staphylococcus aureus. Также из воздуха были высеяны грибы рода Candida. В палате №1 медицинской роты части А выявлено загрязнение воздуха по показателям ОМЧ и S. aureus и Candida spp., в отличие от части В, а в палате №2 данные результаты находились в пределах нормы.
Выводы. В медицинской роте части А и части В имеют место нарушения санитарно-эпидемиологического режима.
ИНВАЗИВНЫЙ АСПЕРГИЛЛЕЗ, ОБУСЛОВЛЕННЫЙ ASPERGILLUS НЕ-FUMIGATUS, У ГЕМАТОЛОГИЧЕСКИХ ПАЦИЕНТОВ ПОСЛЕ ТРАНСПЛАНТАЦИИ ГЕМОПОЭТИЧЕСКИХ СТВОЛОВЫХ КЛЕТОК (ТГСК) И ХИМИОТЕРАПИИ
Попова М.О.1, Рогачева Ю.А.1, Маркова И.В.1, Синяев А.А.1, Волкова А.Г.1, Швецов А.Н.1, Николаев И.Ю.1, Пинегина О.Н.1, Игнатьева С.М.2, Богомолова Т.С.2, Паина О.В.1, Быкова Т.А.1, Дарская Е.И.1, Моисеев И.С.1, Владовская М.Д.1, Бондаренко С.Н.1, Зубаровская Л.С.1, Климко Н.Н.12, Афанасьев Б.В.1
Научно-исследовательский институт детской онкологии, гематологии и трансплантологии им. Р.М. Горбачевой, Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова; 2Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова, Санкт-Петербург Россия
INVASIVE ASPERGILLOSIS CAUSED BY ASPERGILLUS NON-FUMIGATUS IN CHILDREN AND ADULTS AFTER HEMATOPOIETIC STEM CELL TRANSPLANTATION (HSCT) & CHEMOTHERAPY
Popova M.O.1, Rogacheva Y.A.1, Volkova A.G.1, Markova I.V.1, Shvetsov A.N.1, Nikolaev I.Y.1, Pinegina O.N.1, Ignatieva S.M.2, Bogomolova T.S.2, Gevorgayn A.G.1, Paina O.V.1, Bykova Т.А.1, Darskaya E.I.1, Goloshchapov O.V.1, Vladovskaya M.D.1, Bondarenko S.N.1, Moiseev I.S.1, Zubarovskaya L.S.1, Klimko N.N.4 Afanasyev B.V.1
1Raisa Gorbacheva Memorial Research Institute of Children Oncology, Hematology and Transplantation, I.P. Pavlov First St. Petersburg State Medical University; 2 NorthWestern State Medical University named after I.I. Mechnikov, St. Petersburg, Russia
Инвазивный аспергиллез (ИА) является самым частым инвазивным микозом у гематологических пациентов, а Aspergillus fumigatus — основной возбудитель. ИА, обусловленный Aspergillus не-fumigatus, изучен недостаточно.
Материалы и методы. В течение пятилетнего периода (с 2013 по 2018 гг.) в НИИДОГиТ выявили 30 пациентов с ИА, обусловленным A. не-fumigatus. Согласно критериям EORTC/MSG 2019 диагностировали 1 «доказанный» и 29 «вероятных» случаев ИА у детей и взрослых после алло-ТГСК (n=27) и химиотерапии (n=3). Медиана возраста — 26 лет (3-60), мужчин — 53%. Медиана периода наблюдения — 11 (1-58) месяцев.
Результаты. ИА, вызванный A. не-fumigatus, чаще диагностировали у пациентов с острым лимфобластным лейкозом (37%), острым миелоидным лейкозом (30%), апластической анемией (10%), МДС (6,5%) и ХМЛ (6,5%). Обусловленный A. не-fumigatus ИА чаще выявляли после алло-ТГСК (90%), чем химиотерапии (10%). Медиана срока развития ИА после алло-ТГСК составила 155 дней (19-922). ИА, вызванный A. не-fumigatus, развился на фоне протекающей острой реакции «трансплантат против хозяина» (оРТПХ) 2-3 степени с использованием ГКС в
Среда используется для подтверждения
присутствия бактерий родов Proteus, Morganella, Providencia при наличии
роста в жидкой селективной среде (ГОСТ 28560-90, п. 3.2.8 и 4.4)
К
каждой упаковке среды прилагаются флаконы с водным раствором
кристаллического фиолетового массовой концентрацией 1 г/дм3 и щелочным
раствором фенолового красного массовой концентрацией 16 г/дм3.Состав:
пептон мясной ферментативный, дрожжевой гидролизат, натрия тиосульфат,
бычья желчь, маннит, мальтоза, селективные добавки, железа цитрат, агар
микробиологический. Способ
приготовления: 100 г сухой среды растворить в 1 дм3 дистиллированной
воды, нагреть до полного растворения агара, добавить 0,5 см3 раствора
кристаллического фиолетового и 2,0 см3 щелочного раствора фенолового
красного. Среду простелиризовать текучим паром при 100°С в течении 15
минут и разлить асептически по стерильным чашкам Петри. Готовая среда
оранжево-красного цвета, ее можно хранить не более 7 суток при (4 ± 2)°С.Фасовка в пластиковые банки по 500 г.
Расход среды 50 г/дм3.Сухая среда гигроскопична и светочувствительна.Хранить в герметически закрытой упаковке в темном месте при температуре от +2 до +25°С и относительной влажности воздуха не более 60%.
Цена дана за 1 упаковку с учетом НДС 20 %.
Отзывов: 0
Средняя оценка: 0.0
Нет отзывов об этом товаре.
Нет вопросов об этом товаре.
Доставка заказов осуществляется в любые регионы Российской Федерации и страны СНГ.
Цены на нашем сайте указаны с учетом НДС (20% либо 10%).
Оплата заказов производится только в безналичной форме на расчетный счет в рублях Российской Федерации на основании выставленного Счета.
Для бюджетных организаций и государственных структур предусмотрены особые условия оплаты.
Постоянным клиентам предоставляются скидки и индивидуальный порядок расчетов.
Внимание! В связи с нестабильным курсом валют и изменением цен у производителей, просим окончательную стоимость продукции уточнять у наших менеджеров.
Варианты доставки:
Самовывоз со склада в городе Клин
Адрес выдачи: Московская область, г. Клин, ул. Захватаева, д. 4, офис 101
Контактный телефон: +7 (977) 407-05-96
Доставка по Клину и Клинскому району – бесплатно
Доставка по Москве – 1 500 рублей
Доставка любыми транспортными компаниями, службами экспресс-доставки. Стоимость рассчитывается индивидуально для каждого заказа в соответствии с установленными тарифами транспортной компании. Все грузы застрахованы.
Дифференциально-диагностический агар
Главная » Каталог » Питательные среды » Среды для выявления бактерий родов Proteus, Morganella, Providencia » Дифференциально-диагностический агар
Среда используется для подтверждения присутствия бактерий родов Proteus, Morganella, Providencia
Среда используется для подтверждения присутствия бактерий родов Proteus, Morganella, Providencia при наличии роста в жидкой селективной среде (ГОСТ 28560-90, п. 3.2.8 и 4.4)
Расход сухой питательной среды -70г/л
Фасовка: 0,1-1,0кг.